Перейти к:
Спектр генетических форм ожирения и связанных с ним расстройств: Прадера-Вилли-подобные синдромы (часть 1)
https://doi.org/10.14341/omet13334
Аннотация
Прадера-Вилли-подобные синдромы (ПВПС) представляют собой гетерогенную группу заболеваний, характеризующихся набором ключевых клинических проявлений, включающих мышечную гипотонию, ожирение, задержку психомоторного и речевого развития, поведенческие проблемы в отсутствие аномалий метилирования хромосомного района 15q11.2q13. Фенотипические проявления ПВПС имеют значительное перекрытие с классическим синдромом Прадера-Вилли (СПВ) — заболеванием из группы нарушений геномного импринтинга. К ПВПС относят некоторые хромосомные синдромы (делеции 1p36, 2pter, 3p26.3, 6q, 10q26, 19p, субтеломерной делеции 12q, парацентрической инверсии Xq26q28, Xq27-qter дисомии, дупликаций 6q, 15q, Xq21.1q21.31, Xq23q25), болезни импринтинга (синдромы Ангельмана, Темпл, псевдогипопаратиреоз 1А, С типов, псевдопсевдогипопаратиреоз и синдром Шаафа-Янг) и моногенные синдромные формы ожирения (синдромы Мартина-Белл, Барде-Бидля, Альстрёма, Коэна, Бьерсона-Форсмана-Лемана, MYT1L-синдром, SIM1-ассоциированное СПВ-подобное ожирение, GNAI1-ассоциированное нарушение развития нервной системы). В связи с этим сочетание генетической гетерогенности ПВПС и отсутствия у его представителей характерного для СПВ молекулярно-генетического дефекта создает существенные сложности для дифференциальной диагностики в клинической практике. Данный обзор систематизирует современные литературные данные, направленные на детализацию фенотипа, тактику ведения и стратегии лечения синдромов Прадера-Вилли-подобного спектра.
Ключевые слова
Для цитирования:
Панченко Е.Г., Атавина-Ермакова Е.П., Николаева А.Ф., Бойко Т.В., Васюкова О.В., Копытина Д.А., Мокрышева Н.Г., Куцев С.И. Спектр генетических форм ожирения и связанных с ним расстройств: Прадера-Вилли-подобные синдромы (часть 1). Ожирение и метаболизм. 2026;23(2):114-124. https://doi.org/10.14341/omet13334
For citation:
Panchenko E.G., Atavina-Ermakova E.P., Nikolaeva A.F., Boyko T.V., Vasyukova O.V., Kopytina D.A., Mokrysheva N.G., Kutsev S.I. Spectrum of genetic forms of obesity and related disorders: Prader-Willi-like syndromes (part 1). Obesity and metabolism. 2026;23(2):114-124. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/omet13334
Ожирение, будучи хроническим многофакторным заболеванием, приобрело масштабы глобальной пандемии. По последним оценкам, распространенность избыточной массы тела и ожирения среди взрослого населения планеты достигает 2,5 млрд человек, что составляет порядка 43% лиц старше 18 лет [1]. При этом ожирение обладает выраженным генетическим компонентом, что подтверждается данными о наследуемости индекса массы тела (ИМТ), которая варьирует в пределах 40–50% в общей популяции и достигает 70–80% в субпопуляции лиц с ожирением [2]. В связи с этим диагностический поиск у пациентов с ожирением требует комплексной оценки, включающей анализ фенотипических особенностей, данных лабораторного и инструментального обследований. Морбидное ожирение с ранней манифестацией характерно для моногенных форм, этиологией которых являются варианты нуклеотидной последовательности и вариации числа копий, затрагивающих один ген [3]. Патогномоничным признаком является значительное превышение показателей ИМТ, при котором коэффициент стандартного отклонения ИМТ (SDS) зачастую превышает +3,0 уже в первые 3–6 лет жизни [4]. С клинической точки зрения моногенные формы ожирения подразделяются на синдромальные (ассоциированные с задержкой психомоторного развития, черепно-лицевыми дисморфиями и иными признаками дисморфогенеза) и несиндромальные (синдромоподобные) [5]. Несмотря на то, что распространенность избыточной массы тела и ожирения в Российской Федерации достигает 25,3% [6], на долю верифицированных моногенных форм ожирения, по данным современных исследований, приходится не менее 5–7% случаев в структуре данной патологии [7], что подчеркивает важность молекулярно-генетического тестирования для определения тактики ведения таких пациентов.
За последние годы было описано множество случаев пациентов с клиническими характеристиками, схожими с синдромом Прадера-Вилли (СПВ), у которых стандартные методы молекулярно-генетического тестирования не выявляют характерных для СПВ нарушений [8–11].
Доминирующим и зачастую инициирующим диагностический поиск симптомом в данной когорте пациентов выступает морбидное ожирение с ранним дебютом [12]. Для обозначения этого гетерогенного контингента больных в клинической практике утвердился термин «Пациенты с Прадера-Вилли-подобным фенотипом». Дифференциально-диагностический ряд при подозрении на СПВ и Прадера-Вилли-подобный (ПВП) фенотип на сегодняшний день включает широкий спектр генетических синдромов. Помимо классических, таких как синдромы Ангельмана, ломкой X-хромосомы ( Мартина-Белл) и Темпл, а также некоторых микрохромосомных синдромов (делеции 1p36, 2pter, 3p26.3, 6q, 10q26, 19p, субтеломерной делеции 12q, парацентрической инверсии Xq26q28, Xq27-qter дисомии, дупликаций 6q, 15q, Xq21.1q21.31, Xq23q25), в него входят моногенные формы ожирения [8][13]. Также дифференциальную диагностику СПВ часто проводят с синдромами Альстрема, Барде-Бидля, Ангельмана, Коэна, Бёрьесона-Форсмана-Лемана и некоторыми другими состояниями [14].
В рамках настоящего обзора систематизированы современные литературные данные, направленные на детализацию фенотипа, тактику ведения и стратегии лечения синдромов Прадера-Вилли-подобного спектра.
СИНДРОМ АНГЕЛЬМАНА
Синдром Ангельмана (СА) — генетическое заболевание с аутосомно-доминантным типом наследования с пенетрантностью, зависящей от родительского происхождения (болезнь импринтинга), связанное с аномальным метилированием в области 15q11.2q13 или патогенным генетическим вариантом в гене UBE3A материнского аллеля, картированном на 15‑й хромосоме в локусе 11.2 (15q11.2) и кодирующем убиквитин-протеинлигазу E3A (UBE3A — Ubiquitin Protein Ligase E3A) (PMID: 20301323). Частота синдрома Ангельмана варьируется от 1 на 20 000 до 1 на 12 000 живорожденных [16].
Белок UBE3A обладает широким спектром функций: взаимодействует с компонентами протеасомы, регулируя ее активность; участвует в сигнальном пути Wnt, влияя на стабильность β-катенина; участвует в регуляции циркадных ритмов, контролируя деградацию белка BMAL1; регулирует mTOR сигнальный путь; участвует в процессах синаптической пластичности, формируя дендритные шипики и регулируя активность потенциалзависимых калиевых каналов малой проводимости [17–23].
В нейронах наблюдается инактивация отцовского аллеля UBE3A, обусловленная экспрессией антисмыслового транскрипта UBE3A-ATS, которая инициируется с неметилированного отцовского аллеля SNRPN. В результате этих молекулярных событий функционально активным остается аллель UBE3A материнского происхождения [24].
СА характеризуется тяжелой задержкой развития, когнитивным дефицитом, серьезными нарушениями речевого развития, атаксией, тремором конечностей, а также необычным поведением (счастливое выражение лица, частый смех и улыбка, повышенная возбудимость). Также у этих пациентов часто встречаются микроцефалия и эпилепсия. Задержка развития впервые отмечается примерно в возрасте шести месяцев, однако характерные клинические признаки проявляются только после года. В младенчестве для них характерны гипотония, трудности вскармливания, выталкивание языка, нарушения сосания и глотания, частое слюнотечение, чрезмерное заглатывание. У пациентов с синдромом Ангельмана отмечаются такие фенотипические особенности, как уплощенный затылок, выраженная затылочная борозда, макростомия, широко расставленные зубы, выступающий язык и прогнатия. Ожирение в основном развивается у детей старшего возраста и встречается менее чем в 80% случаев [25]. Пациенты с СА по причине однородительской дисомии имеют более высокий риск ожирения по сравнению с делеционным типом [26–30].
Основные клинические проявления синдрома Ангельмана представлены в таблице 1 [25].
Таблица 1. Наиболее частые клинические проявления синдрома Ангельмана
Признак | Частота проявления |
Эпилепсия | 90% |
Проблемы со сном: частые пробуждения, диссомнии, нерегулярные циклы сна и бодрствования | 80–90% |
Поведенческие нарушения: гипермоторная активность, улыбчивость и смешливость, агрессия, тревожность, черты аутистического спектра | 100% |
Задержка моторного развития, тремор | 100% |
Задержка речевого развития /когнитивные нарушения | 100% |
Проблемы с кормлением/желудочно-кишечным трактом | 85% |
Микроцефалия, которая проявляется к 2 годам; чаще всего встречается у людей с делецией 15q11.2q13 | 25–80% |
Лицевые дисморфии: уплощенный затылок, макростомия, широко расставленные зубы, выступающий язык, прогнатия | <80% |
Страбизм | 40–50% |
Сколиоз | дети: 10–30%; взрослые: 30–50% |
Причинами синдрома Ангельмана являются материнские делеции 15q11.2q13 (65–75%); отцовская однородительская диссомия хромосомы 15 (3–7%); патогенные и вероятно-патогенные варианты материнского аллеля гена UBE3A (10–15%); гипометилирование центра импринтинга (ЦИ) в результате микроделеций (0,3%) или невозможности переключения импринта в гаметогенезе (2,5–3%); несбалансированная транслокация хромосом или небольшая интерстициальная делеция в области 15q11.2q13 (менее 1%). Примерно 10% заболевания развивается в результате пока не идентифицированного генетического механизма. Тест первой линии для пациентов с синдромом Ангельмана — метилчувствительная MLPA. При выявлении гипометилирования SNRPN рекомендовано выполнение микросателлитного анализа трио или SNP-хромосомного микроматричного анализа трио для поиска однородительской диссомии отцовского происхождения. В случае отсутствия делеций и гипометилирования SNRPN по результатам метилчувствительной MLPA рекомендовано выполнение секвенирования гена UBE3A. Мутации могут быть как унаследованы по материнской линии, так и возникать de novo на материнском аллеле [15][25].
Лечение синдрома Ангельмана в основном симптоматическое, поскольку для него до сих пор не существует патогенетической терапии. Однако в настоящее время широко изучаются способы реактивации отцовской копии гена UBE3A и антисмысловая терапия как потенциальные методы лечения данного синдрома [31][32].
СИНДРОМ ТЕМПЛ
Синдром Темпл (СТ) — генетическое заболевание с аутосомно-доминантным типом наследования с пенетрантностью, зависящей от родительского происхождения (болезнь импринтинга), связанное с аномальным метилированием в области 14q32 [33].
Частота встречаемости СТ, по данным Orphanet, составляет менее 1 случая на 1 млн новорожденных. В литературе описано менее 100 случаев заболевания [34].
На длинном плече 14‑й хромосомы в локусе 32 расположен кластер импринтированных генов, включающий гены, экспрессирующиеся с отцовского аллеля — DLK1 и RTL1, а также гены, экспрессирующиеся с материнского аллеля — MEG3, RTL1as (антисмысловой транскрипт гена RTL1), MEG8, наряду с многочисленными генами малых ядрышковых РНК (small nucleolar RNA) и микроРНК [35].
Паттерны экспрессии этих импринтированных генов регулируются паттернами метилирования двух дифференциально метилированных регионов (Differentially Methylated Regions — DMRs): основной DMR между отцовски экспрессируемым DLK1 и матерински экспрессируемым MEG3 (MEG3/DLK1 Intergenic Differentially Methylated Region — MEG3/DLK1:IG-DMR), чей паттерн устанавливается в родительских гаметах, и вторичный DMR в области промотора гена MEG3 (MEG3: Transcription Start Site Differentially Methylated Region — MEG3:TSS-DMR), формирующийся в постзиготическом периоде [36]. В соматических тканях человека оба дифференциально метилированных региона характеризуются гиперметилированием на аллеле отцовского происхождения и гипометилированием на аллеле материнского происхождения. Однако в плацентарной ткани MEG3:TSS-DMR, в отличие от MEG3/DLK1:IG-DMR, чей паттерн метилирования сохраняется, гипометилирован в независимости от родительского происхождения аллелей, что свидетельствует о тканеспецифической регуляции импринтинга. MEG3/DLK1:IG-DMR функционирует как иерархически вышестоящий регулятор, определяющий эпигенетический статус MEG3:TSS-DMR в соматических клетках, но не в плаценте [37]. Таким образом, поддержание неметилированного статуса MEG3:TSS-DMR в соматических тканях возможно лишь при сохранении неметилированного статуса MEG3/DLK1:IG-DMR, что отражает функциональную зависимость между этими двумя регуляторными элементами.
Для синдрома Темпл характерны задержка внутриутробного развития, задержка роста, мышечная гипотония, проблемы с кормлением в младенчестве, гонадотропинзависимое преждевременное половое развитие. Из фенотипических особенностей отмечаются выступающий лоб, относительная макроцефалия, акромикрия [33].
Большинство пациентов демонстрируют Сильвера-Рассела- (в среднем до 2 лет) [33] и Прадера-Вилли-подобный фенотип, в том числе в случае MLID [34], так как, несмотря на задержку внутриутробного развития, у большинства пациентов в дальнейшем может развиваться избыточная масса тела и ожирение [34][38–40]. В исследовании Tomoe Ogawa и соавт., в котором предоставлены данные 60 пациентов с синдромом Темпл, медиана возраста выявления ожирения составила 9,2 года [33].
К развитию синдрома Темпл приводят материнская однородительская дисомия хромосомы 14 (72–78% случаев), гипометилирование MEG3-DMR аллеля отцовского происхождения (12–20%), делеция 14q32.2 отцовского происхождения (10%). Гипометилирование MEG3-DMR и делеция 14q32.2 в сочетании с гипометилированием MEG3-ДМР, часто сопровождается гиперметилированием MEG8-DMR [41]. Синдром Темпл в рамках мультилокусных нарушений импринтинга (MLID) встречается редко, ассоциирован с гомозиготным вариантом гена ZNF445 [42]. Тест первой линии для пациентов с синдромом Темпл — метилчувствительная MLPA. При выявлении гипометилирования MEG3 или гипометилирования MEG3 в сочетании с гиперметилированием MEG8 рекомендовано выполнение микросателлитного анализа трио или SNP-хромосомного микроматричного анализа трио для поиска однородительской диссомии материнского происхождения.
Лечение в основном симптоматическое, поскольку для него до сих пор не существует патогенетической терапии. Основная терапия при синдроме Темпл направлена на лечение низкорослости в сочетании с мышечной гипотонией, преждевременного полового развития и психоневрологических особенностей.
НАСЛЕДСТВЕННАЯ ОСТЕОДИСТРОФИЯ ОЛБРАЙТА
Наследственная остеодистрофия Олбрайта (НОО) — набор специфических фенотипических признаков, которые, в зависимости от наличия или отсутствия резистентности к гормонам, могут свидетельствовать о таких заболеваниях, как псевдогипопаратиреоз типа 1А (ПГП типа 1А), псевдогипопаратиреоз типа 1С (ПГП типа 1С) и псевдопсевдогипопаратиреоз (ППГП) [43]. Ключевыми признаками являются низкий рост, брахидактилия типа Е (укорочение преимущественно 4-х и/или 5-х пястных и плюсневых костей и дистальной фаланги большого пальца), лунообразное лицо и подкожные кальцинаты [43][44].
Псевдогипопаратиреоз (ПГП) — группа наследственных заболеваний с аутосомно-доминантным типом наследования с пенетрантностью, зависящей от родительского происхождения (болезнь импринтинга), этиологией которых в основном является дефект гена GNAS, картированного на длинном плече 20‑й хромосомы в локусе 13.32 (20q13.32) и кодирующего α-субъединицу Gs-белка (GNAS - Guanine Nucleotide-binding protein, Alpha Stimulating activity polypeptide) (PMID: 29072892). Распространенность псевдогипопаратиреоза, по сведениям из Orphanet, составляет 1–9 случаев на 1 млн человек, у мальчиков это заболевание встречается в 2 раза реже, чем у девочек. Выделяют три формы псевдогипопартиреоза: ПГП типа 1 (подтипы 1А, 1В, 1С), ПГП типа 2 и псевдопсевдогипопаратиреоз (ППГП). Чаще синдром Прадера-Вилли клинически дифференцируют с ПГП типа 1A, ПГП типа 1С и ППГП [14].
Ключевым звеном патогенеза ПГП 1А и ПГП типа 1С типа является феномен тканеспецифичного геномного импринтинга: в тех тканях, где экспрессия GNAS является биаллельной, частичная функциональная активность Gαs-белка сохраняется благодаря экспрессии отцовского аллеля, однако в проксимальных почечных канальцах, ткани щитовидной железы, гонадах и паравентрикулярных ядрах гипоталамуса экспрессия гена происходит исключительно с материнского аллеля. Его инактивация обусловливает состояние гаплонедостаточности и приводит к полному нарушению передачи сигналов от рецепторов, сопряженных с Gs-белком, в случае с ПГП типа 1А, или же неспособности α-субъединицы Gs-белка реагировать на активацию рецептора, в случае с ПГП типа 1С [45][46]. При ППГП тканеспецифическая экспрессия GNAS с материнского аллеля сохраняется, однако, потеря 50% активности Gαs за счет мутаций на отцовском аллеле нарушает функцию рецептора, сопряженного с Gs-белком [47].
Для псевдогипопаратиреоза типов 1A и 1C типов характерно сочетание фенотипа НОО с резистентностью к гормонам, включая паратиреоидный гормон (ПТГ), тиреотропный гормон (ТТГ), соматотропин-рилизинг-гормон (СРГ), кальцитонин и гонадотропины. Для них также характерно раннее развитие патологического ожирения, оно может начинаться уже в младенчестве, до 2 лет, и может предшествовать эндокринным нарушениям [43][48–50]. Часто встречается апноэ сна (у 45%), но лишь отчасти оно связано с ожирением [43]. У 79% пациентов наблюдается интеллектуальный дефицит. Различить ПГП типа 1A от ПГП типа 1C можно только с помощью анализов ex vivo [51]. При ППГП у пациентов наблюдается нормокальциемия и отсутствует резистентность к гормонам, но имеется фенотип НОО. Ожирение и интеллектуальная недостаточность встречаются реже, чем при ПГП типа 1А, и составляют около 10% случаев [43].
Этиологией ПГП типа 1А являются инактивирующие варианты материнского аллеля гена GNAS в экзонах 1–12 (NM_000516.7), для типа 1С — в экзоне 13 (NM_000516.7), включая как точковые варианты, так и редкие генные перестройки. Мутации могут быть как унаследованы по материнской линии, так и возникать de novo на материнском аллеле, причем оба типа мутаций имеют схожую частоту. ППГП возникает при инактивирующих патогенных и вероятно патогенных генетических вариантах на отцовском аллеле гена GNAS, которые могут быть как унаследованы по отцовской линии, так и возникать de novo на отцовском аллеле [43]. Точковые варианты детектируются с помощью секвенирования (особое внимание следует уделить экзону 1, поскольку этот экзон содержит CG богатый регион, вследствие чего покрытие может быть неполным), тогда как геномные перестройки можно проанализировать с помощью количественных методов, таких как мультиплексная лигированно зависимая амплификация зондов (MLPA) или сравнительная геномная гибридизация (или хромосомный микроматричный анализ) [52].
Специфической терапии НОО на данный момент не разработано. Для пациентов с псевдогипопаратиреозом типов 1А и 1С в первую очередь важна коррекция гипокальциемии, при ее наличии. Терапия гипокальциемии аналогична лечению других форм гипопаратиреоза. Гипотиреоз и резистентность к гонадотропинам тоже корректируются с помощью традиционной заместительной гормональной терапии. Также в некоторых случаях может рассматриваться терапия рекомбинантным гормоном роста [53]. Ожирение в составе данных синдромов представляет собой сложную проблему, так как не имеет специфического лечения. Современные стратегии включают стандартные рекомендации по снижению веса [6].
СИНДРОМ ШААФА-ЯНГ
Синдром Шаафа-Янг (СШЯ) — генетическое заболевание с аутосомно-доминантным типом наследования с пенетрантностью, зависящей от родительского происхождения (болезнь импринтинга), в основе которого лежит дефект гена MAGEL2, картированного на длинном плече 15‑й хромосомы в локусе 11.2 (15q11.2) и кодирующего меланома-ассоциированный антиген L2 (MAGE family member L2 - MAGEL2) [54]. На сегодняшний день по сведениям из базы данных Orphanet в мире зарегистрировано более 250 случаев синдрома Шаафа-Янг.
Белки семейства антигенов меланомы регулируют активность RING-домен содержащих E3 убиквитин-лигаз, отвечающих за убиквитинилирование белков и их последующую протеасомную деградацию [55].
Также считается, что MAGEL2 функционирует как регулятор нейроэндокринных функций гипоталамуса [56].
Заболевание манифестирует только в том случае, если дефект происходит на отцовском аллеле, поскольку материнская копия MAGEL2 импринтирована [57]. MAGEL2 наряду с SNRPN, MKRN3, NDN и др. входит в критический регион, ассоциированный с развитием синдрома Прадера–Вилли [13]. Полная делеция гена MAGEL2, по-видимому, приводит к менее выраженным клиническим проявлениям по сравнению с вариантами, приводящими к синтезу укороченного белка, и, как правило, не ассоциируется с развитием синдрома Шаафа–Янг [58]. Предполагается, что утрата всей отцовской копии гена MAGEL2 вместе с промотором может вызывать гиперэкспрессию материнского аллеля, что подтверждается экспериментальными данными на мышиных моделях с отсутствием отцовской копии гена [59].
К основным клиническим проявлениям СШЯ относятся генерализованная мышечная гипотония, респираторный дистресс-синдром и трудности кормления в младенчестве, задержка развития, интеллектуальная недостаточность, расстройства аутистического спектра, гиперфагия и ожирение в детском или подростковом возрасте [60].
Также для пациентов с СШЯ характерны эндокринопатии, такие как дефицит гормона роста, гипогонадотропный гипогонадизм, нестабильность температуры тела и нарушение циркадных ритмов [60].
Контрактуры суставов являются одним из ранних и клинически значимых признаков, а при более тяжелом течении наблюдается множественный врожденный артрогрипоз, который возникает вследствие сниженной или отсутствующей двигательной активности плода [60].
Полифагия, а в последующем и ожирение, встречается у меньшинства молодых пациентов с CШЯ и, как правило, появляются в более старшем возрасте, в отличие от пациентов с СПВ [60].
В лицевом фенотипе у пациентов с СШЯ отмечаются такие признаки, как макроцефалия, квадратная форма головы и лица, антимонголоидный разрез глаз, гипертелоризм, низко посаженные ушные раковины, выступающая переносица, короткий фильтр, микрогнатия [61].
В 2013 г. впервые были описали четыре пациента с вариантами, приводящими к сдвигу рамки считывания и вариантами, приводящими к образованию стоп-кодона (3 de novo и 1 унаследованный от отца) на отцовском аллеле гена MAGEL2. У этих больных отмечались клинические проявления, частично перекрывающиеся с синдромом Прадера–Вилли — включая неонатальную гипотонию, трудности кормления и симптомы дефицита внимания с гиперактивностью [62]. В 99% случаев причиной синдрома Шаафа-Янг являются точковые мутации гена MAGEL2, среди которых, согласно данным HGMD® Professional (версия 2025.1), преобладают варианты, приводящие к сдвигу рамки считывания и образованию стоп-кодона, также встречаются миссенс-варианты; реже причинами являются делеции и дупликации, что делает секвенирование нового поколения приоритетным для молекулярной диагностики синдрома Шаафа-Янг.
Патогенетическая терапия для СШЯ в настоящее время не разработана. Пациенты нуждаются в предоставлении комплексной терапии, включающей логопедическую коррекцию, психотерапевтическую и психиатрическую помощь, физиотерапию, зондовое кормление (через желудочный или назогастральный зонд), а также заместительную гормональную терапию при необходимости.
СИНДРОМ ЛОМКОЙ Х-ХРОМОСОМЫ (СИНДРОМ МАРТИНА-БЕЛЛ)
Синдром ломкой Х-хромосомы или синдром Мартина-Белл (СМБ), — Х-сцепленное доминантное заболевание, связанное с полной мутацией гена FMR1 или другими вариантами с потерей функции. Ген FMR1 картирован на длинном плече Х-хромосомы в локусе 27.3 (Xq27.3) и кодирует белок, ассоциированный с синдромом ломкой Х-хромосомы (FMRP — Fragile X Mental Retardation Protein) (PMID: 29083768). СМБ с полной мутацией встречается примерно у 1 из 7000 мужчин и 1 из 11 000 женщин, однако, его точная частота неизвестна [63].
Основной этиологический фактор СМБ — увеличение количества тринуклеотидных CGG-повторов в 5’-нетранслируемой области гена FMR1. Количество тринуклеотидных повторов CGG в пределах 5–44 расценивается как нормальный диапазон, тогда как аллели, содержащие 45–54 повтора, относятся к промежуточному диапазону (“серой зоне”), а аллели с 55–200 повторами классифицируются как премутационные [64].
Аллели с промежуточным количеством тринуклеотидных CGG-повторов не оказывают клинически значимого воздействия на состояние здоровья человека. Премутационные аллели FMR1 не влияют на нарушение формирования синапсов и нейрональную пластичность, однако могут проявлять своё действие в более позднем возрасте в виде синдрома первичной недостаточности яичников, ассоциированного с FMR1 (Fragile X-associated Primary Ovarian Insufficiency- FXPOI), или синдрома тремора и атаксии, связанного с FMR1 (Fragile X-associated Tremor and Ataxia Syndrome — FXTAS) [65][66]. В отличие от этого, синдром ломкой Х-хромосомы развивается уже в детском возрасте и, характеризуется наличием более чем 200 CGG-повторов [67].
Для аллелей с нормальным и промежуточным количеством CGG-повторов установлено, что наследование аллеля от отца сопровождается более высокой вероятностью изменения числа CGG-повторов по сравнению с передачей аллеля от матери [68]. При этом премутационные аллели FMR1, имеющие отцовское происхождение, как правило, сохраняют стабильность и передаются без значительных изменений, тогда как премутационные аллели материнского происхождения, имеют тенденцию к дальнейшему увеличению числа повторов и переходу критического порога в 200 CGG-повторов в последующих поколениях [64]. Дополнительным фактором, определяющим стабильность аллеля FMR1 при передаче, является количество и позиция вставок триплета нуклеотидов AGG в составе CGG-повторяющейся последовательности: присутствие таких AGG-вставок обеспечивает более стабильную передачу аллеля без значительных экспансий в процессе наследования [69].
Кроме того, описаны редкие случаи синдрома ломкой Х-хромосомы, связанные не с экспансией тринуклеотидных повторов, а с внутригенными точковыми генетическими вариантами или делециями в последовательности FMR1 — менее, чем в 1% случаев [70–72].
Белковый продукт гена FMR1 — белок FMRP выполняет широкий спектр функций, имеющих ключевое значение для развития и нормального функционирования нервной системы. Он играет центральную роль в нейрогенезе головного мозга, связываясь с рибосомами и регулируя трансляцию определенных мРНК, вовлеченных в формирование и созревание нейрональных синапсов. Помимо участия в трансляционном контроле, FMRP влияет на стабильность мРНК и их внутриклеточный транспорт, а также взаимодействует с различными ионными каналами, регулируя их функциональную активность [73][74]. Известно, что экспрессия FMRP усиливается под действием метаботропных глутаматных рецепторов 5-го типа (Metabotropic Glutamate Receptor type 5 — mGluR5), формируя механизм отрицательной обратной связи, который ограничивает чрезмерную активацию mGluR-сигнального пути и тем самым поддерживает физиологическое соотношение между возбуждением и торможением в синапсах. Потеря FMRP в нейронах сопровождается повышенной экспрессией глутаматных рецепторов 5-го типа, что способствует гипервозбудимости нейронов [75][76]. Также установлено, что дефицит белка FMRP приводит к снижению синтеза γ-аминомасляной кислоты (ГАМК), а также к уменьшению экспрессии ее рецепторов, что приводит к нарушению баланса тормозных и возбуждающих нейромедиаторов [77]. В результате совокупности влияния описанных выше патогенетических механизмов, при дефиците FMRP происходит нарушение формирования когнитивных функций и страдает нормальное интеллектуальное развитие.
СМБ является наиболее распространенной наследственной причиной интеллектуальной недостаточности от легкой до тяжелой степени и самой частой моногенной причиной расстройств аутистического спектра [78]. Фенотипическая картина синдрома очень вариабельна. Для пациентов характерны длинное, узкое лицо с выступающими подбородком и лбом, гипермобильные пальцы и крупные ушные раковины, однако эти проявления становятся более заметными с возрастом [78]. Фенотипические особенности мужчин с СМБ различаются в зависимости от стадии полового созревания. Так, к препубертатным особенностям относятся мышечная гипотония, гастроэзофагеальный рефлюкс, страбизм, судороги, нарушения сна, гипермобильность суставов, плоскостопие, сколиоз, рецидивирующий средний отит, а также задержка моторного и речевого развития с первых лет жизни [72]. К постпубертатным особенностям относятся пролапс митрального клапана, расширение корня аорты и макроорхидизм [72]. Особенности поведения у пациентов с СМБ являются важной проблемой во всех возрастах, у детей до двух лет может наблюдаться снижение ответных реакций и активности, затем постепенно могут нарастать симптомы синдрома дефицита внимания и гиперактивности, а во время или после полового созревания могут усиливаться тревожность, раздражительность и агрессивное поведение [72]. Фенотипические и поведенческие особенности, наблюдаемые у мужчин с СМБ, были зарегистрированы и у женщин с выявленной полной мутацией FMR1 в гетерозиготном состоянии, но с меньшей частотой и в более легкой форме [72].
В редких случаях при СМБ может наблюдаться Прадера-Вилли-подобный фенотип (ПВП СБМ), ввиду развития гиперфагии, приводящей к ожирению, и задержка полового созревания. Melissa Raspa и соавт. в своем исследовании выявили, что у мальчиков с синдромом ломкой Х-хромосомы ожирение встречалось чаще (31%) по сравнению с контрольной группой соответствующего возраста (18%) [79]. По результатам исследований на территории Российской Федерации частота ПВП СМБ не превышает 6% [80]. Пересекающиеся фенотипические признаки СМБ и ПВП СБМ связывают с взаимодействием белка CYFIP1 (цитоплазматический FMRP-взаимодействующий белок 1) и FMRP. CYFIP1 — белковый продукт гена CYFIP1, который локализован в ассоциированной с синдромом Прадера-Вилли (СПВ) и Ангельмана (СА) импринтированной области 15q11q13. Комплекс FMRP и CYFIP1 связывается с фактором инициации трансляции 4Е у эукариот (Eukaryotic Translation Initiation Factor 4E — eIF4E), участвующим в подавлении трансляции определенных мРНК в дендритах и синапсах нейронов. Синаптическая стимуляция приводит к высвобождению CYFIP1 из комплекса FMRP-CYF1P1-eIF4E, что позволяет осуществлять трансляцию [81]. У пациентов с фенотипом ПВП СМБ обнаруживается сниженная экспрессия CYFIP1, что не позволяет должным образом формировать комплекс eIF4E-CYFIP1-FMRP в синапсах и приводит к нарушению синаптической пластичности [78][82].
Тестом первой линии для диагностики СМБ является анализ метилирования промоторной области гена FMR1; при отсутствии аномального метилирования возможно выполнение секвенирования гена FMR1 и поиска делеций и дупликаций [72].
Терапия СМБ в первую очередь ориентирована на коррекцию симптомов заболевания, включая логопедическую помощь, поведенческую терапию, сенсорную интеграцию, трудотерапию и специальное образование. Лекарственные средства, используемые для симптоматического лечения, направлены на минимизацию некоторых поведенческих проблем, связанных с СМБ.
Понимание молекулярных механизмов СМБ может открыть потенциальные направления для разработки новых методов терапии. Например, синдром ломкой Х-хромосомы ассоциирован с усиленной активацией сигнальных путей ERK и mTORC1, которые ингибируются метформином. Таким образом, можно предположить, что он может быть потенциальным средством для лечения СМБ, однако, необходимы дальнейшие исследования [78]. В своей работе Dragana Protic и соавт. рассматривали новые таргетные методы лечения СМБ такими препаратами как сертралин (селективные ингибиторы обратного захвата серотонина), метформин, каннабидиол, акампросат, ловастатин, миноциклин [83].
СИНДРОМ БАРДЕ-БИДЛЯ
Синдром Барде-Бидля (СББ) — генетическое заболевание с аутосомно-рецессивным типом наследования, относящееся к первичным цилиопатиям. Распространенность СББ составляет от 1:100 000 до 1:160 000 в Северной Америке и Европе и может достигать до 1:13 500 — 1:18 000 в некоторых изолированных группах населения [84].
Развитие СББ связано с патогенными и вероятно-патогенными вариантами в генах, кодирующих белки, необходимые для правильной сборки и функционирования первичных ресничек [85]. У млекопитающих первичные реснички, обладающие уникальной структурой «9+0» (девять периферических дуплетов микротрубочек без центральной пары), лишены способности к движению [86]. Эти структуры выполняют сигнальные функции, участвуя в передаче сигналов через рецепторы, сопряженные с G-белком (в лептин-меланокортиновом сигнальном пути) и Wnt-сигнальных путях [87–89]. Кроме того, первичные реснички играют важную роль в формировании асимметрии полушарий головного мозга и регулируют поддержание гомеостаза тканей [90][91].
Биогенез и функциональная стабильность первичных ресничек обеспечиваются механизмом интрафлагеллярного транспорта (ИФТ). Данный процесс опосредуется двумя основными белками: кинезином-2, который осуществляет антероградное перемещение молекулярных грузов к дистальному концу реснички, и динеином-2, отвечающим за их ретроградный транспорт к основанию органеллы [92]. Ключевую роль в организации и регуляции ИФТ играют мультисубъединичные белковые комплексы, такие как BBSome-комплекс и BBS-шаперонный комплекс, и другие белки первичных ресничек, не входящие в состав комплексов [93]. Роль нейрональных первичных ресничек в регуляции энергетического гомеостаза была убедительно продемонстрирована в экспериментах с двойным нокаутом генов Kif3a (кинезин-подобный белок 3А) и Ift88 (белок интрафлагеллярного транспорта 88) на мышиных моделях. У животных наблюдалось развитие гиперфагии, ожирения и повышение концентраций лептина, инсулина и глюкозы в плазме крови [94].
СББ отличается клиническим полиморфизмом и характеризуется дистрофией сетчатки, аномалиями развития почек, гипогонадотропным гипогонадизмом и/или пороками развития мочеполовой системы, полидактилией, интеллектуальной недостаточностью, а также метаболическими нарушениями, включая раннее ожирение и повышенный риск развития сахарного диабета 2 типа [95][96]. У пациентов с СББ ожирение обычно развивается в раннем детстве, у 60% пациентов в возрасте от 2 до 5 лет [84].
Диагностические критерии постановки диагноза синдрома Барде-Бидля (адаптировано из [97]) представлены в таблице 2.
Таблица 2. Диагностические критерии постановки диагноза синдрома Барде-Бидля
Возраст | Клинические критерии | Уровни достоверности при постановке диагноза |
Внутриутробно | Основные: • Постаксиальная полидактилия • Гиперэхогенные включения в почках Вспомогательные: • Гидрометрокольпос • Транспозиция внутренних органов | Постановка диагноза с высоким уровнем достоверности: • пренатальное подтверждение синдрома Барде-Бидля с помощью генетического тестирования; • наличие по крайней мере одного основного критерия; Постановка диагноза с умеренным уровнем достоверности: • подтвержденный синдром Барде-Бидля у сибса пробанда; • наличие по крайней мере одного основного критерия; или • наличие двух основных и одного вспомогательного критерия |
С рождения до 16-ти лет | Основные: • Постаксиальная полидактилия • Раннее ожирение • Дистрофия сетчатки с ранним началом • Аномалии и дисфункция почек Вспомогательные: • Гидрометрокольпос • Микропенис • Аносмия/гипосмия • Нарушения развития нервной системы | Постановка диагноза с высоким уровнем достоверности: • подтверждение синдрома Барде-Бидля у ребенка с помощью генетического тестирования; • наличие по крайней мере одного основного критерия; или • наличие по крайней мере четырех основных критериев; или • наличие по крайней мере трех основных и двух вспомогательных критериев; Постановка диагноза с умеренным уровнем достоверности: • подтвержденный синдром Барде-Бидля у сибса пробанда; • наличие по крайней мере двух основных критериев |
С 16-ти лет | Основные: • Постаксиальная полидактилия • Ожирение • Дистрофия сетчатки • Аномалии/дисфункция почек Вспомогательные: • Гипогонадизм • Микропенис • Аносмия/гипосмия • Нарушения развития нервной системы | Постановка диагноза с высоким уровнем достоверности: • подтверждение синдрома Барде-Бидля с помощью генетического тестирования; • дистрофия сетчатки; • наличие по крайней мере еще одного основного критерия; или • дистрофия сетчатки; • наличие по крайней мере еще трех основных критериев; или • дистрофия сетчатки; • наличие по крайней мере еще двух основных критериев; • наличие по крайней мере двух вспомогательных критериев; Постановка диагноза с умеренным уровнем достоверности: • подтвержденный синдром Барде-Бидля у сибса пробанда; • наличие по крайней мере двух основных критериев |
У пациентов с СББ были выявлены различные варианты по меньшей мере в 26 генах, еще 4 гена были классифицированы как «гены-модификаторы», их количество продолжает расти [84]. В глобальном масштабе наиболее частой причиной заболевания являются дефекты в генах BBS1 и BBS10. Данная тенденция наблюдается и в российской когорте пациентов [98]. Вместе с тем для российской популяции пациентов с синдромом Барде-Бидля характерна уникальная особенность — высокая, достигающая 24%, частота патогенных и вероятно-патогенных вариантов в гене BBS7, что значительно превосходит средний по миру показатель (~1,5–2%). В данном гене идентифицирован многократно встречающийся вариант (NM_176824, p.()), что позволяет предположить у него эффект основателя на территории РФ [99]. Метод диагностики, приоритетный для синдрома Барде-Бидля — секвенирование нового поколения.
В настоящее время для пациентов синдромом Барде-Бидля разработана патогенетическая терапия полифагии и ожирения в виде сетмеланотида, синтетического агониста рецептора меланокортина-4 (MC4R), которая показала положительный эффект в виде уменьшения полифагии и снижения массы тела [100].
Также на мышиных моделях (мыши с нокаутом гена Bbs5) была оценена терапия агонистами рецепторов ГПП-1. По данным транскриптомного анализа при дефекте Bbs5 было выявлено нарушение регуляции эндокринных сигнальных путей, а функциональный анализ подтвердил дефекты в сигнальных путях инсулина, лептина и холецистокинина, в то время как чувствительность к рецептору глюкагоноподобного пептида-1 сохранялась. Лечение агонистами рецепторов ГПП-1 приводило к уменьшению гиперфагии и набора массы тела, улучшению толерантности к глюкозе у мышей с двойным нокаутом Bbs5 [101].
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
При наличии схожести клинических проявлений каждому из синдромов в большинстве случаев присущи уникальные диагностические критерии. Так, наследственная остеодистрофия Олбрайта, как и СПВ, характеризуется низкорослостью и ожирением, однако отличается характерным фенотипом с лунообразным лицом и отсутствием мышечной гипотонии. А для синдрома Темпл, в отличие от СПВ, характерны гонадотропинзависимое преждевременное половое развитие и иные черты лица, хотя оба состояния характеризуются мышечной гипотонией, проблемами с кормлением в младенчестве, низким ростом и ожирением. Для синдрома Прадера-Вилли не характерна полидактилия, как для синдрома Барде-Бидля, хотя и при нем она встречается не всегда.
Прадера-Вилли-подобные синдромы представляют собой гетерогенную группу заболеваний, которая требует междисциплинарной помощи с индивидуальным подходом.
ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ
Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
Источник финансирования: статья подготовлена в рамках выполнения государственного задания № 124020700098-5 (ФГБУ «НМИЦ эндокринологии им. академика И.И. Дедова» Минздрава России) и № 125040704897-7 (ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»).
Участие авторов. Все авторы одобрили финальную версию статьи перед публикацией, выразили согласие нести ответственность за все аспекты работы, подразумевающую надлежащее изучение и решение вопросов, связанных с точностью или добросовестностью любой части работы.
Список литературы
1. World health organization. https://www.who.int/news-room/factsheets/detail/obesity-and-overweight. Presented at: 2016
2. Künzel R, Faust H, Bundalian L, et al. Detecting monogenic obesity : a systematic exome-wide workup of over 500 individuals. Int J Obes (Lond). 2025;(September 2024). doi: https://doi.org/10.1038/s41366-025-01819-0
3. Bouchard C. Genetics of Obesity: What We Have Learned Over Decades of Research. Obesity. 2021;29(5). doi: https://doi.org/10.1002/oby.23116
4. Renard E, Meyre D. Medical semiology of patients with monogenic obesity: A systematic review. Obes Rev. 2024;(September 2023):1-23. doi: https://doi.org/10.1111/obr.13797
5. Saeed S, Froguel P. Obesity : exploring its connection to brain function through genetic and genomic perspectives. Mol Psychiatry. 2024. doi: https://doi.org/10.1038/s41380-024-02737-9
6. Vasyukova OV, Okorokov PL, Malievskiy OA, Neimark AE, Zorin EA, et al. Clinical guidelines «Obesity in children». Obesity and metabolism. 2024;21(4):439-453. doi: https://doi.org/10.14341/omet13194
7. Collet T hai, Schwitzgebel V. Exploring the therapeutic potential of precision medicine in rare genetic obesity disorders: a scientific perspective. Front Nutr. 2024. doi: https://doi.org/10.3389/fnut.2024.1509994
8. Juriaans AF, Kerkhof GF, Hokken-Koelega ACS. The Spectrum of the Prader-Willi-like Pheno-and Genotype: A Review of the Literature. Endocr Rev. 2022;43(1). doi: https://doi.org/10.1210/endrev/bnab026
9. Candelo E, Feinstein MM, Ramirez-Montaño D, Gomez JF, Pachajoa H. First case report of prader-willi-like syndrome in Colombia. Front Genet. 2018;9(MAR). doi: https://doi.org/10.3389/fgene.2018.00098
10. Gilhuis HJ, Van Ravenswaaij CMA, Hamel BJC, Gabreëls FJM. Interstitial 6q deletion with a Prader-Willi-like phenotype: A new case and review of the literature. European Journal of Paediatric Neurology. 2000;4(1). doi: https://doi.org/10.1053/ejpn.1999.0259
11. de Vries BBA, Fryns JP, Butler MG, et al. Clinical and molecular studies in fragile X patients with a Prader-Willi-like phenotype. J Med Genet. 1993;30(9). doi: https://doi.org/10.1136/jmg.30.9.761
12. Bonnefond A, Raimondo A, Stutzmann F, et al. Loss-of-function mutations in SIM1 contribute to obesity and Prader-Willilike features. Journal of Clinical Investigation. 2013;123(7). doi: https://doi.org/10.1172/JCI68035
13. Cheon CK. Genetics of prader-willi syndrome and praderwill-like syndrome. Ann Pediatr Endocrinol Metab. 2016;21(3). doi: https://doi.org/10.6065/apem.2016.21.3.126
14. Driscoll DJ, Miller JL, Schwartz S. NCBI Bookshelf - GeneReviewsTM. Prader-Willi Syndrome. GeneReviews[Intranet]. Published online 2017
15. Zaletaev DV, Nemtsova MV, Strelnikov VV. Epigenetic Regulation Disturbances on Gene Expression in Imprinting Diseases. Molekuliarnaia biologiia. 2022;56(1). doi: https://doi.org/10.31857/S0026898421060148
16. Manik Madaan MDM. Angelman Syndrome. StatPearls [Internet]. 2023. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK560870/
17. Tomaić V, Banks L. Angelman syndrome-associated ubiquitin ligase UBE3A/E6AP mutants interfere with the proteolytic activity of the proteasome. Cell Death Dis. 2015;6(1). doi: https://doi.org/10.1038/cddis.2014.572
18. Kuslansky Y, Sominsky S, Jackman A, et al. Ubiquitin ligase E6AP mediates nonproteolytic polyubiquitylation of β-catenin independent of the E6 oncoprotein. Journal of General Virology. 2016;97(12). doi: https://doi.org/10.1099/jgv.0.000624
19. Gossan NC, Zhang F, Guo B, et al. The E3 ubiquitin ligase UBE3A is an integral component of the molecular circadian clock through regulating the BMAL1 transcription factor. Nucleic Acids Res. 2014;42(9). doi: https://doi.org/10.1093/nar/gku225
20. Sun J, Baudry M, Bi X. Novel neurobiological roles of UBE3A. Oncotarget. 2017;8(8). doi: https://doi.org/10.18632/oncotarget.15105
21. Dindot SV, Antalffy BA, Bhattacharjee MB, Beaudet AL. The Angelman syndrome ubiquitin ligase localizes to the synapse and nucleus, and maternal deficiency results in abnormal dendritic spine morphology. Hum Mol Genet. 2008;17(1). doi: https://doi.org/10.1093/hmg/ddm288
22. Kim H, Kunz PA, Mooney R, Philpot BD, Smith SL. Maternal loss of Ube3a impairs experience-driven dendritic spine maintenance in the developing visual cortex. Journal of Neuroscience. 2016;36(17). doi: https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4204-15.2016
23. Sun J, Zhu G, Liu Y, et al. UBE3A Regulates Synaptic Plasticity and Learning and Memory by Controlling SK2 Channel Endocytosis. Cell Rep. 2015;12(3). doi: https://doi.org/10.1016/j.celrep.2015.06.023
24. Lopez SJ, Segal DJ, LaSalle JM. UBE3A: An E3 ubiquitin ligase with genome-wide impact in neurodevelopmental disease. Front Mol Neurosci. 2019;11. doi: https://doi.org/10.3389/fnmol.2018.00476
25. Dagli AI, Mathews J, Williams CA. Angelman Syndrome Summary Genetic counseling. Published online 2025:1-32
26. Lossie AC, Whitney MM, Amidon D, et al. Distinct phenotypes distinguish the molecular classes of Angelman syndrome. J Med Genet. 2001;38(12). doi: https://doi.org/10.1136/jmg.38.12.834
27. Poyatos D, Guitart M, Gabau E, et al. Severe phenotype in Angelman syndrome resulting from paternal isochromosome 15. J Med Genet. 2002;39(2). doi: https://doi.org/10.1136/jmg.39.2.e4
28. Varela MC, Kok F, Otto PA, Koiffmann CP. Phenotypic variability in Angelman syndrome: Comparison among different deletion classes and between deletion and UPD subjects. European Journal of Human Genetics. 2004;12(12). doi: https://doi.org/10.1038/sj.ejhg.5201264
29. Saitoh S, Wada T, Okajima M, Takano K, Sudo A, Niikawa N. Uniparental disomy and imprinting defects in Japanese patients with Angelman syndrome. In: Brain and Development. 2005;27. doi: https://doi.org/10.1016/j.braindev.2003.12.013
30. Luk HM, Lo IFM. Angelman syndrome in Hong Kong Chinese: A 20 years’ experience. Eur J Med Genet. 2016;59(6-7). doi: https://doi.org/10.1016/j.ejmg.2016.05.003
31. Meng L, Ward AJ, Chun S, Bennett CF, Beaudet AL, Rigo F. Towards a therapy for Angelman syndrome by targeting a long non-coding RNA. Nature. 2015;518(7539). doi: https://doi.org/10.1038/nature13975
32. Powell WT, Coulson RL, Gonzales ML, et al. R-loop formation at Snord116 mediates topotecan inhibition of Ube3a-antisense and allele-specific chromatin decondensation. Proc Natl Acad Sci U S A. 2013;110(34). doi: https://doi.org/10.1073/pnas.1305426110
33. Ogawa T, Narusawa H, Nagasaki K, et al. Temple Syndrome: Comprehensive Clinical Study in Genetically Confirmed 60 Japanese Patients. J Clin Endocrinol Metab. 2025;110(9):3041-3051. doi: https://doi.org/10.1210/clinem/dgae883
34. Juriaans AF, Kerkhof GF, Mahabier EF, et al. Temple Syndrome: Clinical Findings, Body Composition and Cognition in 15 Patients. J Clin Med. 2022;11(21). doi: https://doi.org/10.3390/jcm11216289
35. Baena N, Monk D, Aguilera C, et al. Novel 14q32 . 2 paternal deletion encompassing the whole DLK1 gene associated with Temple syndrome. Clin Epigenetics. 2024:1-11. doi: https://doi.org/10.1186/s13148-024-01652-8
36. Kagami M, Yanagisawa A, Ota M, et al. Temple syndrome in a patient with variably methylated CpGs at the primary MEG3/DLK1:IG-DMR and severely hypomethylated CpGs at the secondary MEG3:TSS-DMR. Clin Epigenetics. 2019;11(1). doi: https://doi.org/10.1186/s13148-019-0640-2
37. Kagami M, O’Sullivan MJ, Green AJ, et al. The IG-DMR and the MEG3- DMR at human chromosome 14q32.2: Hierarchical interaction and distinct functional properties as imprinting control centers. PLoS Genet. 2010;6(6). doi: https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1000992
38. Gillessen-Kaesbach G, Albrecht B, Eggermann T, et al. Molecular and clinical studies in 8 patients with Temple syndrome. Clin Genet. 2018;93(6). doi: https://doi.org/10.1111/cge.13244
39. Kayashima T, Katahira M, Harada N, et al. Maternal isodisomy for 14q21-q24 in a man with diabetes mellitus. Am J Med Genet. 2002;111(1). doi: https://doi.org/10.1002/ajmg.10511
40. Prasasya R, Grotheer KV, Siracusa LD, Bartolomei MS. Temple syndrome and Kagami-Ogata syndrome: Clinical presentations, genotypes, models and mechanisms. Hum Mol Genet. 2020;29. doi: https://doi.org/10.1093/hmg/ddaa133
41. Beygo J, Küchler A, Gillessen-Kaesbach G, et al. New insights into the imprinted MEG8-DMR in 14q32 and clinical and molecular description of novel patients with Temple syndrome. European Journal of Human Genetics. 2017;25(8). doi: https://doi.org/10.1038/ejhg.2017.91
42. Kagami M, Hara-Isono K, Matsubara K, et al. ZNF445: a homozygous truncating variant in a patient with Temple syndrome and multilocus imprinting disturbance. Clin Epigenetics. 2021;13(1). doi: https://doi.org/10.1186/s13148-021-01106-5
43. Haldeman-Englert CR, Hurst AC, Levine MA. Disorders of GNAS Inactivation.; 1993
44. Kopytina DA, Vasyukova OV, Salakhov RR, Okorokov PL, Kopytina EV, et al. Identification of novel pathogenic variants in the GNAS gene in children with morbid obesity and pseudohypoparathyroidism. Obesity and metabolism. 2024;21(4):412- 424. doi: https://doi.org/10.14341/omet13169
45. Tafaj O, Jüppner H. Pseudohypoparathyroidism: one gene, several syndromes. J Endocrinol Invest. 2017;40(4). doi: https://doi.org/10.1007/s40618-016-0588-4
46. Makazan N V, Orlova EM, Kareva MA. Pseudohypothyroidism. Problems of Endocrinology. 2015;61(3). doi: https://doi.org/10.14341/probl201561347-56
47. Jüppner H. Molecular Definition of Pseudohypoparathyroidism Variants. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2021;106(6). doi: https://doi.org/10.1210/clinem/dgab060
48. Kayemba-Kay’s S, Tripon C, Heron A, Hindmarsh P. Pseudohypoparathyroidism type 1a-subclinical hypothyroidism and rapid weight gain as early clinical signs: A clinical review of 10 cases. JCRPE Journal of Clinical Research in Pediatric Endocrinology. 2016;8(4). doi: https://doi.org/10.4274/jcrpe.2743
49. Roizen JD, Danzig J, Groleau V, et al. Resting energy expenditure is decreased in pseudohypoparathyroidism type 1A. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2016;101(3). doi: https://doi.org/10.1210/jc.2015-3895
50. Fitch N. Albright’s hereditary osteodystrophy: A review. Am J Med Genet. 1982;11(1). doi: https://doi.org/10.1002/ajmg.1320110104
51. Levine MA. An update on the clinical and molecular characteristics of pseudohypoparathyroidism. Curr Opin Endocrinol Diabetes Obes. 2012;19(6). doi: https://doi.org/10.1097/MED.0b013e32835a255c
52. Mantovani G, Bastepe M, Monk D, et al. Diagnosis and management of pseudohypoparathyroidism and related disorders: First international Consensus Statement. Nat Rev Endocrinol. 2018;14(8). doi: https://doi.org/10.1038/s41574-018-0042-0
53. Giovanna Mantovani, Emanuele Ferrante, Claudia Giavoli, Agnes Linglart, Marco Cappa, et al. Recombinant human GH replacement therapy in children with pseudohypoparathyroidism type Ia: first study on the effect on growth. J Clin Endocrinol Metab. 2010;95(11):5011–5017. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2010-1649
54. McCarthy J, Lupo PJ, Kovar E, et al. Schaaf-Yang syndrome overview: Report of 78 individuals. Am J Med Genet A. 2018;176(12). doi: https://doi.org/10.1002/ajmg.a.40650
55. Doyle JM, Gao J, Wang J, Yang M, Potts PR. MAGE-RING protein complexes comprise a family of E3 ubiquitin ligases. Mol Cell. 2010;39(6). doi: https://doi.org/10.1016/j.molcel.2010.08.029
56. Hoyos Sanchez MC, Bayat T, Gee RRF, Fon Tacer K. Hormonal Imbalances in Prader–Willi and Schaaf–Yang Syndromes Imply the Evolution of Specific Regulation of Hypothalamic Neuroendocrine Function in Mammals. Int J Mol Sci. 2023;24(17). doi: https://doi.org/10.3390/ijms241713109
57. Schubert T, Schaaf CP. MAGEL2 (patho-)physiology and Schaaf–Yang syndrome. 2025;2(April 2024):35-48. doi: https://doi.org/10.1111/dmcn.16018
58. Buiting K, Di Donato N, Beygo J, et al. Clinical phenotypes of MAGEL2 mutations and deletions. Orphanet J Rare Dis. 2014;9(1). doi: https://doi.org/10.1186/1750-1172-9-40
59. Fountain M, Schaaf C. Prader-Willi Syndrome and Schaaf-Yang Syndrome: Neurodevelopmental Diseases Intersecting at the MAGEL2 Gene. Diseases. 2016;4(1). doi: https://doi.org/10.3390/diseases4010002
60. Schaaf CP, Marbach F. Schaaf-Yang Syndrome Summary Genetic counseling. Published online 2025:1-21
61. Gregory LC, Shah P, Sanner JRF, et al. Mutations in MAGEL2 and L1CAM Are Associated with Congenital Hypopituitarism and Arthrogryposis. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2019;104(12). doi: https://doi.org/10.1210/jc.2019-00631
62. Schaaf CP, Gonzalez-Garay ML, Xia F, et al. Truncating mutations of MAGEL2 cause Prader-Willi phenotypes and autism. Nat Genet. 2013;45(11). doi: https://doi.org/10.1038/ng.2776
63. Razak KA, Dominick KC, Erickson CA. Developmental studies in fragile X syndrome. J Neurodev Disord. 2020;12(1). doi: https://doi.org/10.1186/s11689-020-09310-9
64. Gillett DA, Tigro H, Wang Y. FMR1 Disorders : Basics of Biology and Therapeutics in Development. Published online 2024:1-15
65. Tassone F, Adams J, Berry-Kravis EM, et al. CGG repeat length correlates with age of onset of motor signs of the fragile X-associated tremor/ataxia syndrome (FXTAS). American Journal of Medical Genetics, Part B: Neuropsychiatric Genetics. 2007;144(4). doi: https://doi.org/10.1002/ajmg.b.30482
66. Karimov CB, Moragianni VA, Cronister A, et al. Increased frequency of occult fragile X-associated primary ovarian insufficiency in infertile women with evidence of impaired ovarian function. Human Reproduction. 2011;26(8). doi: https://doi.org/10.1093/humrep/der168
67. Willemsen R, Levenga J, Oostra B. CGG repeat in the FMR1 gene: Size matters. Clin Genet. 2011;80(3). doi: https://doi.org/10.1111/j.1399-0004.2011.01723.x
68. Nolin SL, Glicksman A, Tortora N, et al. Expansions and contractions of the FMR1 CGG repeat in 5,508 transmissions of normal, intermediate, and premutation alleles. Am J Med Genet A. 2019;179(7). doi: https://doi.org/10.1002/ajmg.a.61165
69. Yrigollen CM, Durbin-Johnson B, Gane L, et al. AGG interruptions within the maternal FMR1 gene reduce the risk of offspring with fragile X syndrome. Genetics in Medicine. 2012;14(8). doi: https://doi.org/10.1038/gim.2012.34
70. Saldarriaga W, Payán-Gómez C, González-Teshima LY, Rosa L, Tassone F, Hagerman RJ. Double Genetic Hit: Fragile X Syndrome and Partial Deletion of Protein Patched Homolog 1 Antisense as Cause of Severe Autism Spectrum Disorder. Journal of Developmental and Behavioral Pediatrics. 2020;41(9). doi: https://doi.org/10.1097/DBP.0000000000000850
71. Jiraanont P, Manor E, Tabatadze N, et al. De Novo Large Deletion Leading to Fragile X Syndrome. Front Genet. 2022;13. doi: https://doi.org/10.3389/fgene.2022.884424
72. Hunter JE, Berry-Kravis E, Hipp H, Todd PK. FMR1 Disorders.; 1993
73. Protic DD, Aishworiya R, Salcedo-Arellano MJ, et al. Fragile X Syndrome: From Molecular Aspect to Clinical Treatment. Int J Mol Sci. 2022;23(4). doi: https://doi.org/10.3390/ijms23041935
74. Deng PY, Klyachko VA. Channelopathies in fragile X syndrome. Nat Rev Neurosci. 2021;22(5). doi: https://doi.org/10.1038/s41583-021-00445-9
75. Ligsay A, Hagerman RJ. Review of targeted treatments in fragile X syndrome. Intractable Rare Dis Res. 2016;5(3). doi: https://doi.org/10.5582/irdr.2016.01045
76. Gross C, Hoffmann A, Bassell GJ, Berry-Kravis EM. Therapeutic Strategies in Fragile X Syndrome: From Bench to Bedside and Back. Neurotherapeutics. 2015;12(3). doi: https://doi.org/10.1007/s13311-015-0355-9
77. Braat S, D’Hulst C, Heulens I, et al. The GABAA receptor is an FMRP target with therapeutic potential in fragile X syndrome. Cell Cycle. 2015;14(18). doi: https://doi.org/10.4161/15384101.2014.989114
78. Los WLSHBMSE. Fragile X Syndrome.; 2023. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK459243/
79. Raspa M, Bailey DB, Bishop E, Holiday D, Olmsted M. Obesity, food selectivity, and physical activity in individuals with fragile X syndrome. Am J Intellect Dev Disabil. 2010;115(6). doi: https://doi.org/10.1352/1944-7558-115.6.482
80. Е.Г. Панченко, Е.Б. Кузнецова ОАС [и др. ]. Прадера-Вилли подобный фенотип синдрома Мартина-Белл. // Российский вестник перинатологии и педиатрии. — 2022. —Т.67. —№4. — С. 266.
81. de Rubeis S, Bagni C. Regulation of molecular pathways in the Fragile X Syndrome: Insights into Autism Spectrum Disorders. J Neurodev Disord. 2011;3(3). doi: https://doi.org/10.1007/s11689-011-9087-2
82. Nowicki ST, Tassone F, Ono MY, et al. The Prader-Willi phenotype of fragile X syndrome. Journal of Developmental and Behavioral Pediatrics. 2007;28(2). doi: https://doi.org/10.1097/01.DBP.0000267563.18952.c9
83. Protic D, Salcedo-Arellano MJ, Dy JB, Potter LA, Hagerman RJ. New Targeted Treatments for Fragile X Syndrome. Curr Pediatr Rev. 2019;15(4). doi: https://doi.org/10.2174/1573396315666190625110748
84. Beales PL, Haqq AM, Zacchia M, Miller J, Dollfus H, Shoemaker AH. Hyperphagia in Bardet – Biedl syndrome : Pathophysiology, burden, and management. 2025;(May 2024):1-9. doi: https://doi.org/10.1111/obr.13915
85. Melluso A, Secondulfo F, Capolongo G, Capasso G, Zacchia M. Bardet-Biedl Syndrome: Current Perspectives and Clinical Outlook. Ther Clin Risk Manag. 2023;19. doi: https://doi.org/10.2147/TCRM.S338653
86. Yang DJ, Hong J, Kim KW. Hypothalamic primary cilium: A hub for metabolic homeostasis. Exp Mol Med. 2021;53(7). doi: https://doi.org/10.1038/s12276-021-00644-5
87. Mykytyn K, Askwith C. G-Protein-Coupled receptor signaling in cilia. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2017;9(9). doi: https://doi.org/10.1101/cshperspect.a028183
88. Wang Y, Bernard A, Comblain F, et al. Melanocortin 4 receptor signals at the neuronal primary cilium to control food intake and body weight. Journal of Clinical Investigation. 2021;131(9). doi: https://doi.org/10.1172/JCI142064
89. Niehrs C. Cilia as Wnt signaling organelles. Trends Cell Biol. 2025;35(1):24-32. doi: https://doi.org/10.1016/j.tcb.2024.04.001
90. Djenoune L, Mahamdeh M, Truong T V., et al. Cilia function as calcium-mediated mechanosensors that instruct left-right asymmetry. Science (1979). 2023;379(6627). doi: https://doi.org/10.1126/science.abq7317
91. Sun JS, Yang DJ, Kinyua AW, et al. Ventromedial hypothalamic primary cilia control energy and skeletal homeostasis. Journal of Clinical Investigation. 2021;131(1). doi: https://doi.org/10.1172/JCI138107
92. Mitra A, Gioukakis E, Mul W, Peterman EJG. Delivery of intraflagellar transport proteins to the ciliary base and assembly into trains. Published online 2025:1-17
93. Priya S, Nampoothiri S, Sen P, Sripriya S. Bardet-Biedl syndrome: Genetics, molecular pathophysiology, and disease management. Indian J Ophthalmol. 2016;64(9). doi: https://doi.org/10.4103/0301-4738.194328
94. Davenport JR, Watts AJ, Roper VC, et al. Disruption of Intraflagellar Transport in Adult Mice Leads to Obesity and Slow-Onset Cystic Kidney Disease. Current Biology. 2007;17(18). doi: https://doi.org/10.1016/j.cub.2007.08.034
95. Shoemaker A. Bardet-Biedl syndrome: A clinical overview focusing on diagnosis, outcomes and best-practice management. Diabetes Obes Metab. 2024;26(S2). doi: https://doi.org/10.1111/dom.15494
96. Forsyth R, Gunay-aygun M. Bardet-Biedl Syndrome Overview 1. Clinical Characteristics of Bardet-Biedl Syndrome Establishing the Clinical Diagnosis of Bardet-Biedl Syndrome. Published online 2025:1-21
97. Dollfus H, Lilien MR, Maffei P, et al. Bardet-Biedl syndrome improved diagnosis criteria and management : Inter European Reference Networks consensus statement and recommendations. European Journal of Human Genetics. 2024;(May). doi: https://doi.org/10.1038/s41431-024-01634-7
98. Florea L, Caba L, Gorduza EV. Bardet–biedl syndrome— multiple kaleidoscope images: Insight into mechanisms of genotype–phenotype correlations. Genes (Basel). 2021;12(9). doi: https://doi.org/10.3390/genes12091353
99. Orlova M, Gundorova P, Kadnikova V, Polyakov A. Spectrum of pathogenic variants and high prevalence of pathogenic BBS7 variants in Russian patients with Bardet – Biedl syndrome. 2024;(July):1-9. doi: https://doi.org/10.3389/fgene.2024.1419025
100. Haqq AM, Chung WK, Dollfus H, et al. Efficacy and safety of setmelanotide, a melanocortin-4 receptor agonist, in patients with Bardet-Biedl syndrome and Alström syndrome: a multicentre, randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 3 trial with an open-label period. Lancet Diabetes Endocrinol. 2022;10(12). doi: https://doi.org/10.1016/S2213-8587(22)00277-7
101. Singh A, Haq N, Yang M, et al. Transcriptome-guided GLP-1 receptor therapy rescues metabolic and behavioral disruptions in a BardetBiedl syndrome mouse model. :1-14
Об авторах
Е. Г. ПанченкоРоссия
Панченко Елизавета Григорьевна, м.н.с.
ID РИНЦ: 1080414; WoS: JXX-3224-2024
Москва
Конфликт интересов:
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
Е. П. Атавина-Ермакова
Россия
Атавина-Ермакова Евгения Павловна
Москва
Конфликт интересов:
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
А. Ф. Николаева
Россия
Николаева Александра Федоровна , н.с.
ID РИНЦ: 1230208; WoS: GNP-5006-2022; Scopus Author ID: 58137347800
Москва
Конфликт интересов:
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
Т. В. Бойко
Россия
Бойко Тимур Вячеславович
Москва
Конфликт интересов:
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
О. В. Васюкова
Россия
Васюкова Ольга Владимировна , к.м.н.
Researcher ID: AAO-375 0-2020; Scopus Author ID: 57192194141
Москва
Конфликт интересов:
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
Д. А. Копытина
Россия
Копытина Дарья Александровна
Scopus Author ID: 58853779500
Москва
Конфликт интересов:
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
Н. Г. Мокрышева
Россия
Мокрышева Наталья Георгиевна , д.м.н., профессор, академик РАН
Researcher ID: AAY-3761-2020; Scopus Author ID: 35269746000
Москва
Конфликт интересов:
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
С. И. Куцев
Россия
Куцев Сергей Иванович , д.м.н., профессор, академик РАН
Scopus ID: 8296960500; Researcher ID: L-3633-2018; AuthorID: 80842
Москва
Конфликт интересов:
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей публикации.
Рецензия
Для цитирования:
Панченко Е.Г., Атавина-Ермакова Е.П., Николаева А.Ф., Бойко Т.В., Васюкова О.В., Копытина Д.А., Мокрышева Н.Г., Куцев С.И. Спектр генетических форм ожирения и связанных с ним расстройств: Прадера-Вилли-подобные синдромы (часть 1). Ожирение и метаболизм. 2026;23(2):114-124. https://doi.org/10.14341/omet13334
For citation:
Panchenko E.G., Atavina-Ermakova E.P., Nikolaeva A.F., Boyko T.V., Vasyukova O.V., Kopytina D.A., Mokrysheva N.G., Kutsev S.I. Spectrum of genetic forms of obesity and related disorders: Prader-Willi-like syndromes (part 1). Obesity and metabolism. 2026;23(2):114-124. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/omet13334
JATS XML
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License (CC BY-NC-ND 4.0).



































