<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">ometendo</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Ожирение и метаболизм</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Obesity and metabolism</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2071-8713</issn><issn pub-type="epub">2306-5524</issn><publisher><publisher-name>Endocrinology Research Centre</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.14341/omet13097</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">ometendo-13097</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ОБЗОРЫ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>REVIEWS</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Патофизиологические взаимосвязи метаболического синдрома и микробиоты кишечника</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Pathophysiologic interrelationships of metabolic syndrome and gut microbiota</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-1577-7077</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Климчук</surname><given-names>А. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Klimchuk</surname><given-names>A. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Климчук Анастасия Васильевна, к.м.н., доцент кафедры внутренней медицины №2</p><p>Симферополь</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Anastasia V. Klimchuk, Associate Professor, Department of Internal Medicine No. 2</p><p>Simferopol</p></bio><email xlink:type="simple">anastasiya-klim@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0009-0007-1828-5496</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Крицкая</surname><given-names>Д. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Kritskaya</surname><given-names>D. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Крицкая Дарья Владимировна, студентка кафедры внутренней медицины №2</p><p>Scopus Author ID: 1233361</p><p>Симферополь</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Daria V. Kritskaya, Student, Department of Internal Medicine No. 2</p><p>Scopus Author ID: 1233361</p><p>Simferopol</p></bio><email xlink:type="simple">dari.kritccc@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0009-0001-8235-7315</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Ивашкова</surname><given-names>Е. О.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Ivashkova</surname><given-names>E. O.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Ивашкова Екатерина Олеговна, студентка кафедры внутренней медицины №2</p><p>Симферополь</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Ekaterina O. Ivashkova, Student, Department of Internal Medicine No. 2</p><p>Simferopol</p></bio><email xlink:type="simple">ivashkova.catya@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-5175-4468</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Коновалова</surname><given-names>П. С.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Konovalova</surname><given-names>P. S.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Коновалова Полина Сергеевна, ординатор кафедры терапии</p><p>Москва</p><p> </p></bio><bio xml:lang="en"><p>Polina S. Konovalova, Resident of the Department of Internal Medicine</p><p>Moscow</p></bio><email xlink:type="simple">ponyllin@bk.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-5486-7262</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Яцков</surname><given-names>И. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Yatskov</surname><given-names>I. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Яцков Игорь Анатольевич, к.м.н., доцент кафедры внутренней медицины №2</p><p>Scopus Author ID:  57218873902</p><p>295051, Симферополь, бульвар Ленина 5/7 </p></bio><bio xml:lang="en"><p>Igor A. Yatskov, PhD, Associate Professor, Department of Internal Medicine No. 2</p><p>295051, Lenin boulevard 5/7, Simferopol</p></bio><email xlink:type="simple">egermd@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>Ордена Трудового Красного Знамени Медицинский Институт имени С. И. Георгиевского ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет имени В. И. Вернадского»</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Order of the Red Banner of Labor S. I. Georgievsky Medical Institute V. I. Vernadsky Crimean Federal University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГБУ «ГНЦ РФ ФМБЦ им. А.И. Бурназяна»</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>FGBU "State Research Center RF FMBC named after A.I. Burnazyan"</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2025</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>09</day><month>12</month><year>2025</year></pub-date><volume>22</volume><issue>3</issue><fpage>222</fpage><lpage>228</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Климчук А.В., Крицкая Д.В., Ивашкова Е.О., Коновалова П.С., Яцков И.А., 2025</copyright-statement><copyright-year>2025</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Климчук А.В., Крицкая Д.В., Ивашкова Е.О., Коновалова П.С., Яцков И.А.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Klimchuk A.V., Kritskaya D.V., Ivashkova E.O., Konovalova P.S., Yatskov I.A.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.omet-endojournals.ru/jour/article/view/13097">https://www.omet-endojournals.ru/jour/article/view/13097</self-uri><abstract><p>В условиях современного мира все глобальнее становится проблема ожирения и метаболического синдрома. Социальные и экологические факторы, играющие роль в развитии этих состояний, еще не до конца изучены, однако уже сейчас накапливаются данные, свидетельствующие о том, что развитию ожирения и метаболического синдрома способствуют неблагоприятные условия раннего периода жизни, например, заболевания матери в периоды беременности и лактации, использование различных химических и лекарственных агентов, низкая масса плода при рождении, неблагоприятные режим и качество питания. Все эти факторы оказывают воздействие на состояние желудочно-кишечного тракта, в частности приводят к дисбалансу кишечной микрофлоры. Накапливаются данные о том, что микробиом кишечника людей с ожирением структурно и функционально отличен от микрофлоры кишечника здорового человека. Выявление прочной корреляционной связи между этими параметрами может открыть перспективы для профилактики метаболического синдрома и всех ассоциированных с ним состояний путем поддержания здоровья кишечной микрофлоры. Целью данной статьи является освещение данных исследований, проводимых на животных и людях, которые подтверждают наличие патофизиологических механизмов влияния кишечной микрофлоры на развитие ожирения и сопутствующего метаболического синдрома, а также поиск возможностей профилактики данных состояний посредством добавления пре- и пробиотиков к пище.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>The problem of obesity and metabolic syndrome is becoming increasingly global in the modern world. The social and environmental factors that play a role in the development of these conditions are not yet fully understood, but there is already accumulating evidence that the development of obesity and metabolic syndrome is promoted by unfavorable conditions in early life, such as maternal diseases during pregnancy and lactation, the use of various chemical and medicinal agents, low birth weight of the fetus, and unfavorable dietary patterns and quality of nutrition. All these factors have their impact on the gastrointestinal tract, particularly leading to an imbalance of the intestinal microflora. Evidence is accumulating that the gut microbiome of obese people is structurally and functionally different from the gut microflora of healthy people. The identification of a strong correlation between these parameters may offer prospects for the prevention of metabolic syndrome and all associated conditions by maintaining the health of the gut microflora. The aim of this article is to highlight the data from animal and human studies that confirm the presence of pathophysiological mechanisms of the influence of the intestinal microflora on the development of obesity and the associated metabolic syndrome, and to search for opportunities to prevent these conditions through the addition of pre- and probiotics to food.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>микробиом кишечника</kwd><kwd>микробиота</kwd><kwd>ожирение</kwd><kwd>метаболический синдром</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>intestinal microbiome</kwd><kwd>microbiota</kwd><kwd>obesity</kwd><kwd>metabolic syndrome</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement xml:lang="ru">Работа выполнена по инициативе авторов без привлечения финансирования.</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body><p>Ожирение и метаболический синдром становятся все более глобальной проблемой в условиях современного мира и являются главной неинфекционной эпидемией. По данным ВОЗ, в 2016 г. избыточный вес был выявлен у 39% населения (39% для мужчин и 40% для женщин), ожирение у 13% (11% для мужчин и 15% для женщин). По прогнозам Всемирной федерации по борьбе с ожирением 2023 г., в течение 12 лет количество людей, имеющих избыточный вес или ожирение, составит 51% населения Земли — это более 4 млрд человек. Развитие ожирения — многофакторный патофизиологический процесс, на который оказывают влияние генетические, социальные, различные внутренние и внешние факторы. В связи с этим растет значимость открытия всех патофизиологических механизмов его возникновения, а также причин прогрессирования данного состояния с целью определения методов профилактики и лечения этой категории пациентов.</p><p>Микробиота кишечника представляет собой совокупность всех бактерий, архей, грибов, протист и вирусов, населяющих желудочно-кишечный тракт человека. Экосистема кишечника включает в себя более тысячи уникальных штаммов бактерий, численность которых на порядок выше численности клеток человеческого организма. В настоящее время накапливается все больше данных, демонстрирующих их значимую роль в регуляции здоровья [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Известно, что кишечная микробиота синтезирует витамины, а также способствует поддержанию гомеостаза пищеварительной и иммунной систем посредством тесных симбиотических связей с организмом хозяина [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>]. Есть сведения о том, что микробиом оказывает влияние и на центральную нервную систему (ЦНС), секретируя нейротрансмиттеры, такие как ГАМК и триптофан [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Прокариотические организмы, как и другие органы и системы, динамически реагируют на внешние и внутренние физиологические сигналы для поддержания гомеостатического состояния организма.</p><sec><title>МИКРОБИОТА КИШЕЧНИКА И ДИЕТА</title><p>Общеизвестно, что состав микробиоты кишечника человека варьирует в зависимости от возраста, генетических факторов, массы тела, геологического местонахождения, а также рациона. Согласно исследованиям, до 57% микробного состава кишечника обусловлено особенностями питания, в то время как на генетически опосредованные вариации приходится лишь 12%, а изменения диеты способны приводить к быстрой видимой реструктуризации микрофлоры всего за сутки [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>].</p><p>Так, в исследованиях на мышах было показано, что диета с высоким содержанием жиров значительно снижает бактериальное разнообразие у мышей, но этот эффект легко обратим при возвращении к нормальному рациону [<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>]. Эффект был воспроизведен у людей, перешедших с диеты, богатой клетчаткой, на диету с высоким содержанием жиров и сахара [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>]. Примечательно, что негативный эффект диеты с высоким содержанием жиров (high-fat diet, далее — HFD) является комплексным, так как при повторных циклах HFD происходит ускоренный набор веса после периода нормально питания [<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>]. Описано, что подобные изменения в микробиоте могут длиться дольше, чем продолжительность жизни человека и приводить к исчезновению комменсальных штаммов из поколения в поколение [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>]. В таких случаях восстановление разнообразия у следующих поколений может достигаться только путем фекальной трансплантации. Однако есть данные, что HFD снижает численность Lactobacillus, Bifidobacterium, Akkermansia, Faecalibaculum и Blautia, обогащая микробиом такими штаммами, как Desulfovibrionaceae, Rikenellaceae RC9 и Mucispirillum. HFD приводил к ожирению у самцов мышей, а повышенное потребление клетчатки в совокупности с HFD способно увеличивать разнообразие кишечной микробиоты, содержание короткоцепочечных жирных кислот (Short-chainfattyacids, далее — SCFAs) и расходования энергии [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>].</p></sec><sec><title>МИКРОБИТА КИШЕЧНИКА И МАССА ТЕЛА</title><p>По данным многочисленных исследований, у пациентов с ожирением повышено количество Bacteroidetes, Рroteobacteria и снижено содержание Actinobacteria, Firmicutes, TM7 (Saccharibacteria), Fusobacteria, а также чаще верифицируются филотипы Tenericutes, Planctomycetes и Lentisphaerae по сравнению с подобными показателями здоровых людей. В микробиоме толстой кишки пациентов с ожирением без сопутствующего метаболического синдрома реже регистрируется филотип Lentisphaerae, наблюдается повышение количества Firmicutes и снижение Bacteroidetes по сравнению с показателями из группы пациентов, страдающих метаболическим синдромом [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>].</p><p>Первые исследования, продемонстрировавшие связь между микробиомом и ожирением, проводились на стерильных мышах, устойчивых к ожирению, вызываемому диетой, даже в условиях питания с высоким содержанием жиров [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Фенотип ожирения передавался животным через фекальную трансплантацию от мышей с генетически детерменированным ожирением, что приводило к значительному приросту массы тела у животных из контрольной группы [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>]. Аналогичные результаты были получены при проведении исследований на моно- и дизиготных парах близнецов, дискордантных по ожирению. Микробная инокуляция приводила к прогрессирующему набору жировой массы у обладателей нормального индекса массы тела (ИМТ) после получения микрофлоры от близнеца с избыточным весом или ожирением [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. Исследования состава микрофлоры с целью определения «штаммов стройности» выявили ассоциативную связь с повышением соотношения бактерий Bacteriodetes:Firmicutes, тогда как у людей с ожирением эта таксономическая пропорция инвертируется [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. В подтверждение этой модели выступают и данные, полученные при мониторинге микробиома пациентов с ожирением в период снижения веса [<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>]. Обнаружена низкая сила корреляционной связи между ожирением и соотношением бактерий Bacteriodetes:Firmicutes в связи с выраженными межличностными различиями и небольшими размерами выборки, что, вероятно, искажало результаты исследований [<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>].</p><p>Хотя таксономический состав микробиома здорового человека доподлинно неизвестен, очевиден факт важности микробного разнообразия для поддержания гомеостаза организма. Так, снижение богатства микробных генов в фекалиях чаще выявляется у людей с избыточной массой тела, ожирением и метаболическим синдромом [<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>]. Эта модель объясняется множеством метаболических ниш, занимаемых определенным бактериальными колониями.</p><p>В связи с вышеизложенным, оправданы попытки регуляции состава микрофлоры кишечника в качестве потенциального терапевтического метода в отношении ожирения и метаболического синдрома. Коррекция потребления макронутриентов хозяином с целью изменения микробиоты, связанной с метаболическими нарушениями, можно расценивать как один из способов борьбы с ожирением.</p></sec><sec><title>МИКРОБИОТА КИШЕЧНИКА И ЭНЕРГЕТИЧЕСКИЙ БАЛАНС</title><p>Основной причиной возникновения ожирения является хронический положительный энергетический баланс. Нарушение регуляции распределения веществ в состоянии постоянного профицита приводит к накоплению жировой ткани, увеличению массы тела и множеству обменных нарушений [<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>]. Известно, что нарушения баланса кишечной микрофлоры при сопутствующем ожирении отклонены в пользу популяции тех бактерий, которые способны извлекать энергетические ресурсы из пищи в большей степени, что приводит к перераспределению питательных веществ и развитию ожирения [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>]. Таким образом, бактериальная ферментация неперевариваемых человеческим организмом углеводов, присутствующих в рационе, способствует чрезмерному образованию SCFAs и прочих липогенных предшественников и способна влиять на энергетический баланс хозяина [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Известно, что благодаря извлечению энергии из SCFAs обеспечивается около 10% суточной потребности человека, кроме того, при бактериальной ферментации образуются полезные метаболиты: пропионат — предшественник глюконеогенеза, также ацетат и бутират, которые включаются в обмен жирных кислот и холестерина [20–23].</p><p>Дополнительно SCFAs служат сигнальными молекулами, взаимодействующими с рецепторными G-белками тканей и оказывая влияние на метаболизм глюкозы, белков и жирных кислот (Free fatty acid receptors — FFAR). Таким образом, состав пула SCFAs определяет метаболическое состояние хозяина [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>Кроме того, сигнальная активность SCFAs влияет на активность желудочно-кишечного тракта и внутренних органов, считается ключевым звеном в регуляции взаимосвязи кишечника и центральной нервной системы [<xref ref-type="bibr" rid="cit24">24</xref>]. Многие исследования на животных и людях подтверждают связь между повышенным уровнем SCFAs в слепой кишке и фекалиях и склонностью к ожирению, что объясняется более высокой скоростью ферментации углеводов и извлечения из них энергетических ресурсов [25–28]. Однако метаболические эффекты SCFAs плейотропны: увеличивая время транзита пищи по толстой кишке, наряду с извлечением дополнительной энергии путем усиленной бактериальной ферментации повышается абсорбция важных микроэлементов из пищи [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>].</p></sec><sec><title>МИКРОБИОТА КИШЕЧНИКА И АППЕТИТ</title><p>Известно, что передача сигналов SCFAs через FFAR 2 и 3 типа стимулирует секрецию глюкагоноподобного пептида 1 (ГПП-1) клетками кишечника, который повышает секрецию инсулина, снижает секрецию глюкагона и подавляет аппетит [<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit31">31</xref>]. Исследования на мышах показывают, что SFCAs усиливает выработку в кишечнике анорексогенного пептида YY и лептина, которые в гипоталамусе также влияют на аппетит и чувство сытости [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>][32–35]. Наряду с энтероэндокринными свойствами метаболиты SCFAs проявляют и нейроактивность и способны напрямую влиять на аппетит. Так, ацетат может проходить через гематоэнцефалический барьер и усиливать гипоталамическую габанергическую нейротрансмиссию, также подавляя аппетит и снижая объем потребления продуктов с высоким содержанием жиров [36–38]. Дополнительно к снижению потребления пищи активируются различные терморегуляторные гены, что приводит к усилению митохондриальной активности, экспрессии разобщающего белка 2-го типа с повышением соотношения АМФ к АТФ, что стимулирует окислительные процессы в печени и жировой ткани через альфа2 5’-АМФ-активируемуюпротеинкиназу, и приводит к «потемнению» жировой ткани с активацией окисления липидов, подавляя накопление жира в организме и липидов в печени за счет регуляции генов PPAR alpha и белков, связанных с окислением жирных кислот [39–42]. Эти эффекты были исследованы на людях и продемонстрировали, что введение в толстую кишку смесей SCFAs, содержащих ацетат, пропионат и бутират, увеличивает окисление липидов и расход энергии в состоянии покоя у исследуемых с ожирением, что может приводить к долгосрочным преимуществам в вопросе контроля веса [<xref ref-type="bibr" rid="cit43">43</xref>].</p></sec><sec><title>МИКРОБИОТА КИШЕЧНИКА И СИСТЕМНОЕ ВОСПАЛЕНИЕ</title><p>Наряду с обменными нарушениями при метаболическом синдроме состояние хронического системного воспаления, а уровни С-реактивного белка (СРБ) и провоспалительных цитокинов тесно связаны с развитием ожирения и повышение сердечно-сосудистых рисков, неалкогольной жировой болезни печени и сахарного диабета 2 типа (СД2) [44–46]. Недавно была выявлена связь между системным воспалением на фоне ожирения и развитием инсулинорезистентности [<xref ref-type="bibr" rid="cit47">47</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit48">48</xref>]. Хотя эти причинно-следственные связи до конца не изучены, имеются данные о том, что изменения микробиоты кишечника могут влиять на передачу иммунных сигналов в контексте метаболического синдрома [<xref ref-type="bibr" rid="cit49">49</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>].</p><p>Микроорганизмы кишечника занимают внешнюю поверхность слизистого слоя кишечного эпителия, где они взаимодействуют с пищевыми компонентами, в то время как внутренний слизистый слой эпителия кишечника является преградой для их воздействия на эпителиальные клетки и попадания патогенов в системный кровоток. Некоторые бактерии также выполняют защитную функцию и препятствуют инвазии экзогенных агентов и микроорганизмов, способных нанести вред хозяину [<xref ref-type="bibr" rid="cit51">51</xref>]. Многие комменсальные кишечные бактерии стабилизируют слизистую оболочку и способствуют обмену муцина, стимулируют выработку эндоканнабиноидов, способных уменьшать воспалительные реакции [<xref ref-type="bibr" rid="cit49">49</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit52">52</xref>]. Также некоторые из бактерий способны усиливать синтез белков в соединительной ткани, что улучшает барьерную функцию слизистой оболочки [<xref ref-type="bibr" rid="cit53">53</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit54">54</xref>]. Микробиом кишечника обеспечивает клетки эпителия энергией и строительными материалами, что стимулирует их рост и пролиферацию, усиливает секрецию слизи и нормализует проницаемость кишечной стенки, а это снижает системное воспаление и иммунореактивность [55–57].</p><p>При ожирении нарушается барьерная функция кишечника из-за наличия дисбиоза, развивается метаболическая эндотоксинемия [<xref ref-type="bibr" rid="cit58">58</xref>]. Повышенная абсорбция бактериальных липополисахаридов (ЛПС), экспрессируемых на поверхности грамотрицательных штаммов, изменение проницаемости кишечной стенки и транслокация кишечных эндотоксинов в системный кровоток инициируют многочисленные провоспалительные пути, которые приводят к органическим изменениям в тканях и органах, сопряженных с метаболическим синдромом [<xref ref-type="bibr" rid="cit59">59</xref>]. ЛПС клеточной стенки грамотрицательных микроорганизмов стимулирует toll-подобные рецепторы слизистых и периферических тканей и запускает каскад провоспалительных реакций [<xref ref-type="bibr" rid="cit60">60</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit61">61</xref>]. Выделяется фенотип ожирения с повышенным уровнем ЛПС в плазме, при котором развивается метаболическая эндотоксинемия [<xref ref-type="bibr" rid="cit60">60</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit61">61</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit62">62</xref>]. В сравнительном исследовании было выявлено, что уровни циркулирующих эндотоксинов на 20% выше у людей с ожирением и на 125% — у больных СД2 в сравнении со здоровыми людьми [<xref ref-type="bibr" rid="cit63">63</xref>]. Впервые связь метаболической эндотоксинемии и ожирения была изучена на грызунах: было обнаружено, что уровень ЛПС в плазме повышается при употреблении пищи с высоким содержанием жиров, что в дальнейшем приводит к метаболической дисрегуляции, а именно к гипергликемии и инсулинорезистентности [<xref ref-type="bibr" rid="cit64">64</xref>]. Особый интерес представляет то, что этот эффект достигался при искусственном подкожном введении ЛПС в плазму животных без увеличения потребления ими жиров с пищей, что свидетельствует о том, что провоспалительное состояние само по себе способствует нарушению обменных процессов и развитию ожирения. Потенциально восстановление баланса между резидентными микроорганизмами и врожденным иммунитетом слизистой оболочки способно ослабить системные эффекты и разорвать порочный круг метаболического синдрома.</p></sec><sec><title>ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРЕБИОТИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ</title><p>В настоящий момент диетические рекомендации могут сводиться к увеличению потребления пре- и пробиотиков с пищей. Например, при введении пребиотической смеси ксиоолигосахарида и инулина уменьшаются провоспалительные эффекты диеты с высоким содержанием жиров, а именно снижается концентрация ЛПС в плазме и ЛПС-зависимая экспрессия ИЛ-1b [<xref ref-type="bibr" rid="cit65">65</xref>]. У женщин с ожирением, получавших пребиотики, содержащие инулин/олигофруктозу, отмечалось увеличение популяций Bifidobacteriumи Faecalibacterium, что коррелировало со снижением концентрации ЛПС в плазме и уменьшением процентного содержания жировой ткани [<xref ref-type="bibr" rid="cit66">66</xref>]. Возможно, вызываемая пребиотиками пролиферация комменсальных штаммов положительно влияет на структуру слизистой оболочки кишечника, что приводит к улучшению барьерной функции, и, как следствие, снижению транслокации эндотоксинов, а также ослаблению активации TLR [<xref ref-type="bibr" rid="cit67">67</xref>]. Также этот пребиотический эффект может быть дополнительно увеличен за счет усиления синтеза глюкагоноподобного пептида 2 типа, усиливающего барьерную функцию кишечника за счет активации синтеза белков в эпителии [<xref ref-type="bibr" rid="cit68">68</xref>]. В исследованиях на животных выявлено, что увеличение потребления пребиотиков способствует энтероэндокринной дифференцировке L-клеток кишечника и повышает уровни анорексигенных пептидов PYY иГПП-1 [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit68">68</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit69">69</xref>]. Добавление пребиотиков (фруктанов — 16 г/сут) увеличивает уровни PYY/GLP1 в плазме и уменьшает чувство голода, а потребление инулина в дозе 21 г/сут приводит к увеличению концентрации PYY в плазме, подавлению выработки грелина и, как следствие, снижению потребления пищи с уменьшением жировой массы [<xref ref-type="bibr" rid="cit70">70</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit71">71</xref>]. Исследование физиологической активности сложных эфиров инулина-пропионата показало, что прием пребиотических добавок в дозе 20 г/день вызывал заметное улучшение чувствительности к инсулину и снижение концентрации маркеров системного воспаления в сравнении с контрольной группой, получавшей целлюлозу [<xref ref-type="bibr" rid="cit72">72</xref>]. Эффект был связан с повышенными концентрациями пропионата в стуле, что указывает на важность SCFAs в инсулин-сенсибилизации пребиотиков [<xref ref-type="bibr" rid="cit73">73</xref>]. Предлагалось множество механизмов действия пребиотиков на уровень гликемии, например, опосредованный адипонектиновый клиренс свободных жирных кислот из плазмы или системные эффекты SCFAs, усиливающие метаболизм глюкозы и снижающие уровень свободных жирных кислот [74–77]. Но даже в отсутствие четкого понимания биохимических процессов пребиотики уже доказали свою эффективность в коррекции обменных нарушений при ожирении и метаболическом синдроме.</p></sec><sec><title>ЗАКЛЮЧЕНИЕ</title><p>Таким образом, связь между составом кишечной микрофлоры и развитием таких состояний, как избыточный вес, ожирение и сопутствующий им метаболический синдром, не вызывает сомнений. Множество исследований в данной области уже открыли некоторые из патофизиологических механизмов, однако многие из них еще предстоит изучить. На данном этапе существуют возможности для коррекции и профилактики развития и прогрессирования метаболических нарушений путем воздействия на микробиом кишечника посредством коррекции питания.</p></sec><sec><title>ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ</title><p>Источники финансирования. Работа выполнена по инициативе авторов без привлечения финансирования.</p><p>Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с содержанием настоящей статьи.</p><p>Участие авторов. Климчук А.В. — определение концепции статьи, анализ данных, написание статьи; Яцков И.А. — анализ данных, внесение в рукопись существенной (важной) правки с целью повышения научной ценности статьи; Ивашкова Е.О. — анализ данных, написание статьи; Коновалова П.С. — анализ данных, написание статьи; Крицкая Д.В. — анализ данных, написание статьи. Все авторы одобрили финальную версию статьи перед публикацией, выразили согласие нести ответственность за все аспекты работы, подразумевающую надлежащее изучение и решение вопросов, связанных с точностью или добросовестностью любой части работы.</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Dinan TG, Cryan JF. Brain–gut–microbiota axis—Mood, metabolism and behaviour. Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2017;14:69–70. doi: https://doi.org/10.1111/spc3.12309</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dinan TG, Cryan JF. Brain–gut–microbiota axis—Mood, metabolism and behaviour. Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2017;14:69–70. doi: https://doi.org/10.1111/spc3.12309</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bäckhed F, Ley RE, Sonnenburg JL, et al. Host-Bacterial Mutualism in the Human Intestine. Science. 2005;307:1915. doi: https://doi.org/10.1126/science.1104816</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bäckhed F, Ley RE, Sonnenburg JL, et al. Host-Bacterial Mutualism in the Human Intestine. Science. 2005;307:1915. doi: https://doi.org/10.1126/science.1104816</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bäckhed F, Ding H, Wang T, et al. The gutmicrobiota as an environmental factor that regulates fat storage. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004;101:15718. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.0407076101</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bäckhed F, Ding H, Wang T, et al. The gutmicrobiota as an environmental factor that regulates fat storage. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004;101:15718. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.0407076101</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Белоглазов В.А., Яцков И.А., Кумельский Е.Д., Половинкина В.В. Метаболическая эндотоксинемия: возможные причины и последствия // Ожирение и метаболизм. — 2021. — Т.18. — №3 — С.320-326. doi: https://doi.org/10.14341/omet12750</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Beloglazov VA, Yatskov IA, Kumelsky ED, Polovinkina VV. Metabolic endotoxemia: possible causes and consequences. Obesity and metabolism. 2021;18(3):320-326. (In Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Thaiss CA, Itav S, Rothschild D, et al. Persistent microbiome alterations modulate the rate of post-dieting weight regain. Nature. 2016;540:544–551. doi: https://doi.org/10.1038/nature20796</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Thaiss CA, Itav S, Rothschild D, et al. Persistent microbiome alterations modulate the rate of post-dieting weight regain. Nature. 2016;540:544–551. doi: https://doi.org/10.1038/nature20796</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sonnenburg ED, Smits SA, Tikhonov M, et al. Diet-induced extinctions in the gut microbiota compound over generations. Nature. 2016;529:212–215. doi: https://doi.org/10.1038/nature16504</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sonnenburg ED, Smits SA, Tikhonov M, et al. Diet-induced extinctions in the gut microbiota compound over generations. Nature. 2016;529:212–215. doi: https://doi.org/10.1038/nature16504</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lecerf J-M, Dépeint F, Clerc E, et al. Xylo-oligosaccharide (XOS) in combination with inulin modulates both the intestinal environment and immune status in healthy subjects, while XOS alone only shows prebiotic properties. Br. J. Nutr. 2012;108:1847–1858. doi: https://doi.org/10.1017/S0007114511007252</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lecerf J-M, Dépeint F, Clerc E, et al. Xylo-oligosaccharide (XOS) in combination with inulin modulates both the intestinal environment and immune status in healthy subjects, while XOS alone only shows prebiotic properties. Br. J. Nutr. 2012;108:1847–1858. doi: https://doi.org/10.1017/S0007114511007252</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Turnbaugh PJ, Ley RE, Mahowald MA, et al. An obesity-associated gut microbiome with increased capacity for energy harvest. Nature. 2006;444:1027–1031. doi: https://doi.org/10.1038/nature05414</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Turnbaugh PJ, Ley RE, Mahowald MA, et al. An obesity-associated gut microbiome with increased capacity for energy harvest. Nature. 2006;444:1027–1031. doi: https://doi.org/10.1038/nature05414</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ridaura VK, Faith JJ, Rey FE, et al. Gut microbiota from twins discordant for obesity modulate metabolism in mice. Science (80- ). 2013. doi: https://doi.org/10.1126/science.1241214</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ridaura VK, Faith JJ, Rey FE, et al. Gut microbiota from twins discordant for obesity modulate metabolism in mice. Science (80- ). 2013. doi: https://doi.org/10.1126/science.1241214</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ley RE, Turnbaugh PJ, Klein S, Gordon JI. Human gut microbes associated with obesity. Nature. 2006;444:1022–1023. doi: https://doi.org/10.1038/4441022a</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ley RE, Turnbaugh PJ, Klein S, Gordon JI. Human gut microbes associated with obesity. Nature. 2006;444:1022–1023. doi: https://doi.org/10.1038/4441022a</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ley RE, Bäckhed F, Turnbaugh P, et al. Obesity alters gut microbialecology. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2005;102:11070. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.0504978102</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ley RE, Bäckhed F, Turnbaugh P, et al. Obesity alters gut microbialecology. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2005;102:11070. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.0504978102</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nadal I, Santacruz A, Marcos A, et al. Shifts in clostridia, bacteroides and immunoglobulin-coating fecalbacteria associated with weight loss in obese adolescents. Int. J. Obes. 2009;33:758–767. doi: https://doi.org/10.1038/ijo.2008.260</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nadal I, Santacruz A, Marcos A, et al. Shifts in clostridia, bacteroides and immunoglobulin-coating fecalbacteria associated with weight loss in obese adolescents. Int. J. Obes. 2009;33:758–767. doi: https://doi.org/10.1038/ijo.2008.260</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Remely M, Tesar I, Hippe B, et al. Gut microbiota composition correlateswith changes in body fat content due to weight loss. Benef. Microbes. 2015;6:431–439. doi: https://doi.org/10.3920/BM2014.0104</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Remely M, Tesar I, Hippe B, et al. Gut microbiota composition correlateswith changes in body fat content due to weight loss. Benef. Microbes. 2015;6:431–439. doi: https://doi.org/10.3920/BM2014.0104</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sze MA, Schloss PD. Looking for a Signal in the Noise: Revisiting Obesity and the Microbiome. MBio. 2016;7:e01018-16. doi: https://doi.org/10.1128/mbio.01018-16</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sze MA, Schloss PD. Looking for a Signal in the Noise: Revisiting Obesity and the Microbiome. MBio. 2016;7:e01018-16. doi: https://doi.org/10.1128/mbio.01018-16</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Le Chatelier E, Nielsen T, Qin J, et al. Richness of human gut microbiome correlates with metabolic markers. Nature. 2013;500:541–546. doi: https://doi.org/10.1038/nature12506</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Le Chatelier E, Nielsen T, Qin J, et al. Richness of human gut microbiome correlates with metabolic markers. Nature. 2013;500:541–546. doi: https://doi.org/10.1038/nature12506</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Turnbaugh PJ, Hamady M, Yatsunenko T, et al. A core gut microbiome in obese and lean twins. Nature. 2009;457:480–484. doi: https://doi.org/10.1038/nature07540</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Turnbaugh PJ, Hamady M, Yatsunenko T, et al. A core gut microbiome in obese and lean twins. Nature. 2009;457:480–484. doi: https://doi.org/10.1038/nature07540</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Canfora EE, Meex RCR, Venema K, Blaak EE. Gut microbial metabolites in obesity, NAFLD and T2DM. Nat. Rev. Endocrinol. 2019;15:261–273. doi: https://doi.org/10.1038/s41574-019-0156-z</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Canfora EE, Meex RCR, Venema K, Blaak EE. Gut microbial metabolites in obesity, NAFLD and T2DM. Nat. Rev. Endocrinol. 2019;15:261–273. doi: https://doi.org/10.1038/s41574-019-0156-z</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nehra V, Allen JM, Mailing LJ, et al. Gut Microbiota: Modulation of Host Physiology in Obesity. Physiology. 2016.31:327–335. doi: https://doi.org/10.1152/physiol.00005.2016</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nehra V, Allen JM, Mailing LJ, et al. Gut Microbiota: Modulation of Host Physiology in Obesity. Physiology. 2016.31:327–335. doi: https://doi.org/10.1152/physiol.00005.2016</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Roediger WEW. Utilization of Nutrients by Isolated Epithelial Cells of the Rat Colon. Gastroenterology. 1982;83:424–429</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Roediger WEW. Utilization of Nutrients by Isolated Epithelial Cells of the Rat Colon. Gastroenterology. 1982;83:424–429</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bergman EN. Energy contributions of volatile fatty acids from the gastrointestinal tract in various species. Physiol. Rev. 1990;70:567–590. doi: https://doi.org/10.1152/physrev.1990.70.2.567</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bergman EN. Energy contributions of volatile fatty acids from the gastrointestinal tract in various species. Physiol. Rev. 1990;70:567–590. doi: https://doi.org/10.1152/physrev.1990.70.2.567</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Den Besten G, Lange K, Havinga R, et al. Gut-derived short-chain fatty acids are vividly assimilated into hostcarbohydrates and lipids. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2013; 305:G900–G910. doi: https://doi.org/10.1152/ajpgi.00265.2013</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Den Besten G, Lange K, Havinga R, et al. Gut-derived short-chain fatty acids are vividly assimilated into hostcarbohydrates and lipids. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2013; 305:G900–G910. doi: https://doi.org/10.1152/ajpgi.00265.2013</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Høverstad T, Midtvedt T. Short-Chain Fatty Acids in Germfree Mice and Rats. J. Nutr. 1986;116:1772–1776. doi: https://doi.org/10.1093/jn/116.9.1772</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Høverstad T, Midtvedt T. Short-Chain Fatty Acids in Germfree Mice and Rats. J. Nutr. 1986;116:1772–1776. doi: https://doi.org/10.1093/jn/116.9.1772</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Agustí A, García-Pardo MP, López-Almela I, et al. Interplay Between the Gut-Brain Axis, Obesity and Cognitive Function. Front. Neurosci. 2018;12:155. doi: https://doi.org/10.3389/fnins.2018.00155</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Agustí A, García-Pardo MP, López-Almela I, et al. Interplay Between the Gut-Brain Axis, Obesity and Cognitive Function. Front. Neurosci. 2018;12:155. doi: https://doi.org/10.3389/fnins.2018.00155</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Fernandes J, Su W, Rahat-Rozenbloom S, et al. Adiposity, gut microbiota andfaecal short chain fatty acids are linked in adult humans. Nutr. Diabetes. 2014;4:e121. doi: https://doi.org/10.1038/nutd.2014.23</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Fernandes J, Su W, Rahat-Rozenbloom S, et al. Adiposity, gut microbiota andfaecal short chain fatty acids are linked in adult humans. Nutr. Diabetes. 2014;4:e121. doi: https://doi.org/10.1038/nutd.2014.23</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Schwiertz A, Taras D, Schäfer K, et al. Microbiota and SCFA in Lean and Overweight Healthy Subjects. Obesity. 2010;18:190–195. doi: https://doi.org/10.1038/oby.2009.167</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Schwiertz A, Taras D, Schäfer K, et al. Microbiota and SCFA in Lean and Overweight Healthy Subjects. Obesity. 2010;18:190–195. doi: https://doi.org/10.1038/oby.2009.167</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit26"><label>26</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gogineni V, Morrow L, Malesker M, Gregory P. Probiotics: History and Evolution. J. Anc. Dis. Prev. Remedies. 2013;1:1–7. doi: https://doi.org/10.3920/BM2014.0103</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gogineni V, Morrow L, Malesker M, Gregory P. Probiotics: History and Evolution. J. Anc. Dis. Prev. Remedies. 2013;1:1–7. doi: https://doi.org/10.3920/BM2014.0103</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit27"><label>27</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Belobrajdi DP, King RA, Christophersen CT, Bird AR. Dietary resistant starch dose-dependently reduces adiposity in obesityprone and obesity-resistant male rats. Nutr. Metab. 2012;9:93. doi: https://doi.org/10.1186/1743-7075-9-93</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Belobrajdi DP, King RA, Christophersen CT, Bird AR. Dietary resistant starch dose-dependently reduces adiposity in obesityprone and obesity-resistant male rats. Nutr. Metab. 2012;9:93. doi: https://doi.org/10.1186/1743-7075-9-93</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit28"><label>28</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Samuel BS, Shaito A, Motoike T, et al. Effects of the gut microbiota on host adiposity are modulated by the short-chain fatty-acid binding G protein-coupled receptor, Gpr41. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008;105:16767. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.0808567105</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Samuel BS, Shaito A, Motoike T, et al. Effects of the gut microbiota on host adiposity are modulated by the short-chain fatty-acid binding G protein-coupled receptor, Gpr41. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008;105:16767. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.0808567105</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit29"><label>29</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">De Vadder F, Kovatcheva-Datchary P, Goncalves D, et al. Microbiota-Generated Metabolites Promote Metabolic Benefits via Gut-Brain Neural Circuits. Cell. 2014;156:84–96. doi: https://doi.org/10.1016/j.cell.2013.12.016</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">De Vadder F, Kovatcheva-Datchary P, Goncalves D, et al. Microbiota-Generated Metabolites Promote Metabolic Benefits via Gut-Brain Neural Circuits. Cell. 2014;156:84–96. doi: https://doi.org/10.1016/j.cell.2013.12.016</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit30"><label>30</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tolhurst G, Heffron H, Lam YS, et al. Short-Chain Fatty Acids Stimulate Glucagon-Like Peptide-1 Secretion via the G-Protein–Coupled Receptor FFAR2. Diabetes. 2012;61:364. doi: https://doi.org/10.2337/db11-1019</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tolhurst G, Heffron H, Lam YS, et al. Short-Chain Fatty Acids Stimulate Glucagon-Like Peptide-1 Secretion via the G-Protein–Coupled Receptor FFAR2. Diabetes. 2012;61:364. doi: https://doi.org/10.2337/db11-1019</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit31"><label>31</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zaibi MS, Stocker CJ, O’Dowd J, et al. Roles of GPR41 and GPR43 in leptin secretory responses of murine adipocytes to short chainfatty acids. FEBS Lett. 2010;584:2381–2386. doi: https://doi.org/10.1016/j.febslet.2010.04.027</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zaibi MS, Stocker CJ, O’Dowd J, et al. Roles of GPR41 and GPR43 in leptin secretory responses of murine adipocytes to short chainfatty acids. FEBS Lett. 2010;584:2381–2386. doi: https://doi.org/10.1016/j.febslet.2010.04.027</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit32"><label>32</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Forbes S, Stafford S, Coope G, et al. Selective FFA2 Agonism Appears to Act via Intestinal PYY to Reduce Transit and Food Intake but Does Not Improve Glucose Tolerance in Mouse Models. Diabetes. 2015;64:3763. doi: https://doi.org/10.2337/db15-0481</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Forbes S, Stafford S, Coope G, et al. Selective FFA2 Agonism Appears to Act via Intestinal PYY to Reduce Transit and Food Intake but Does Not Improve Glucose Tolerance in Mouse Models. Diabetes. 2015;64:3763. doi: https://doi.org/10.2337/db15-0481</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit33"><label>33</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhou J, Martin RJ, Tulley RT, et al. Dietary resistant starch upregulates total GLP-1 and PYY in a sustained daylongmanner through fermentation in rodents. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2008;295:E1160–E1166. doi: https://doi.org/10.1152/ajpendo.90637.2008</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhou J, Martin RJ, Tulley RT, et al. Dietary resistant starch upregulates total GLP-1 and PYY in a sustained daylongmanner through fermentation in rodents. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2008;295:E1160–E1166. doi: https://doi.org/10.1152/ajpendo.90637.2008</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit34"><label>34</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chambers ES, Viardot A, Psichas A, et al. Effects of targeted delivery of propionate to the human colonon appetite regulation, body weight maintenance and adiposity in overweight adults. Gut. 2015;64:1744. doi: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2014-307913</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chambers ES, Viardot A, Psichas A, et al. Effects of targeted delivery of propionate to the human colonon appetite regulation, body weight maintenance and adiposity in overweight adults. Gut. 2015;64:1744. doi: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2014-307913</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit35"><label>35</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Frost G, Sleeth ML, Sahuri-Arisoylu M, et al. The short-chain fatty acid acetate reduces appetite via a central homeostatic mechanism. Nat. Commun. 2014;5:3611. doi: https://doi.org/10.1038/ncomms4611</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Frost G, Sleeth ML, Sahuri-Arisoylu M, et al. The short-chain fatty acid acetate reduces appetite via a central homeostatic mechanism. Nat. Commun. 2014;5:3611. doi: https://doi.org/10.1038/ncomms4611</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit36"><label>36</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Li Z, Yi C-X, Katiraei S, et al. Butyrate reduces appetite and activates brown adipose tissue via the gut-brain neural circuit. Gut. 2018;67:1269. doi: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2017-314050</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Li Z, Yi C-X, Katiraei S, et al. Butyrate reduces appetite and activates brown adipose tissue via the gut-brain neural circuit. Gut. 2018;67:1269. doi: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2017-314050</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit37"><label>37</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Goswami C, Iwasaki Y, Yada T. Short-chain fatty acids suppress food intake by activating vagal afferent neurons. J. Nutr. Biochem. 2018;57:130–135. doi: https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2018.03.009</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Goswami C, Iwasaki Y, Yada T. Short-chain fatty acids suppress food intake by activating vagal afferent neurons. J. Nutr. Biochem. 2018;57:130–135. doi: https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2018.03.009</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit38"><label>38</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gao Z, Yin J, Zhang J, et al. Butyrate Improves Insulin Sensitivity and Increases Energy Expenditure in Mice. Diabetes. 2009;58:1509. doi: https://doi.org/10.2337/db08-1637</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gao Z, Yin J, Zhang J, et al. Butyrate Improves Insulin Sensitivity and Increases Energy Expenditure in Mice. Diabetes. 2009;58:1509. doi: https://doi.org/10.2337/db08-1637</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit39"><label>39</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sahuri-Arisoylu M, Brody LP, Parkinson JR, et al. Reprogramming of hepatic fat accumulation and ‘browning’ of adipose tissue by theshort-chain fatty acid acetate. Int. J. Obes. 2016;40:955–963. doi: https://doi.org/10.1038/ijo.2016.23</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sahuri-Arisoylu M, Brody LP, Parkinson JR, et al. Reprogramming of hepatic fat accumulation and ‘browning’ of adipose tissue by theshort-chain fatty acid acetate. Int. J. Obes. 2016;40:955–963. doi: https://doi.org/10.1038/ijo.2016.23</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit40"><label>40</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kondo T, Kishi M, Fushimi T, Kaga T. Acetic Acid Upregulates the Expression of Genes for Fatty Acid Oxidation Enzymes in Liver To Suppress Body Fat Accumulation. J. Agric. Food Chem. 2009;57:5982–5986. doi: https://doi.org/10.1021/jf900470c</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kondo T, Kishi M, Fushimi T, Kaga T. Acetic Acid Upregulates the Expression of Genes for Fatty Acid Oxidation Enzymes in Liver To Suppress Body Fat Accumulation. J. Agric. Food Chem. 2009;57:5982–5986. doi: https://doi.org/10.1021/jf900470c</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit41"><label>41</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Den Besten G, Bleeker A, Gerding A, et al. Short-Chain Fatty Acids Protect Against High-Fat Diet–Induced Obesity via a PPARγ-Dependent Switch From Lipogenesis to Fat Oxidation. Diabetes.2015;64:2398. doi: https://doi.org/10.1194/jlr.R036012</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Den Besten G, Bleeker A, Gerding A, et al. Short-Chain Fatty Acids Protect Against High-Fat Diet–Induced Obesity via a PPARγ-Dependent Switch From Lipogenesis to Fat Oxidation. Diabetes.2015;64:2398. doi: https://doi.org/10.1194/jlr.R036012</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit42"><label>42</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Canfora EE, van der Beek CM, Jocken JWE, et al. Colonic infusions of short-chain fatty acid mixtures promote energymetabolism in overweight/obese men: A randomized crossover trial. Sci. Rep. 2017;7:2360. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-017-02546-x</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Canfora EE, van der Beek CM, Jocken JWE, et al. Colonic infusions of short-chain fatty acid mixtures promote energymetabolism in overweight/obese men: A randomized crossover trial. Sci. Rep. 2017;7:2360. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-017-02546-x</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit43"><label>43</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chambers ES, Byrne CS, Aspey K, et al. Acute oral sodium propionate supplementation raises resting energy expenditure and lipid oxidation in fasted humans. Diabetes Obes. Metab. 2018;20:1034–1039. doi: https://doi.org/10.1111/dom.13159</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chambers ES, Byrne CS, Aspey K, et al. Acute oral sodium propionate supplementation raises resting energy expenditure and lipid oxidation in fasted humans. Diabetes Obes. Metab. 2018;20:1034–1039. doi: https://doi.org/10.1111/dom.13159</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit44"><label>44</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Choi J, Joseph L, Pilote L. Obesity and C-reactive protein in various populations: A systematic review and meta-analysis. Obes. Rev. 2013;14:232–244. doi: https://doi.org/10.1111/obr.12003</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Choi J, Joseph L, Pilote L. Obesity and C-reactive protein in various populations: A systematic review and meta-analysis. Obes. Rev. 2013;14:232–244. doi: https://doi.org/10.1111/obr.12003</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit45"><label>45</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bahceci M, Gokalp D, Bahceci S, et al. The correlation between adiposity and adiponectin, tumor necrosis factor α, interleukin-6 and high sensitivity C-reactive protein levels. Is adipocyte size associated with inflammation in adults? J. Endocrinol. Investig. 2007;30:210–214. doi: https://doi.org/10.1007/BF03347427</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bahceci M, Gokalp D, Bahceci S, et al. The correlation between adiposity and adiponectin, tumor necrosis factor α, interleukin-6 and high sensitivity C-reactive protein levels. Is adipocyte size associated with inflammation in adults? J. Endocrinol. Investig. 2007;30:210–214. doi: https://doi.org/10.1007/BF03347427</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit46"><label>46</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hotamisligil GS. Inflammation and metabolic disorders. Nature. 2006;444:860–867. doi: https://doi.org/10.1038/nature05485</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hotamisligil GS. Inflammation and metabolic disorders. Nature. 2006;444:860–867. doi: https://doi.org/10.1038/nature05485</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit47"><label>47</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yuan M, Konstantopoulos N, Lee J, et al. Reversal of Obesity and Diet-Induced Insulin Resistance with Salicylates or Targeted Disruption of Ikkβ. Science. 2001;293:1673. doi: https://doi.org/10.1126/science.1061620</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yuan M, Konstantopoulos N, Lee J, et al. Reversal of Obesity and Diet-Induced Insulin Resistance with Salicylates or Targeted Disruption of Ikkβ. Science. 2001;293:1673. doi: https://doi.org/10.1126/science.1061620</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit48"><label>48</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Osborn O, Olefsky JM. The cellular and signaling networks linking the immune system and metabolism in disease. Nat. Med. 2012;18:363–374. doi: https://doi.org/10.1038/nm.2627</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Osborn O, Olefsky JM. The cellular and signaling networks linking the immune system and metabolism in disease. Nat. Med. 2012;18:363–374. doi: https://doi.org/10.1038/nm.2627</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit49"><label>49</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ukena SN, Singh A, Dringenberg U, et al. Probiotic Escherichia coli Nissle 1917 inhibits leaky gut by enhancing mucosal integrity. PLoS ONE. 2007;2:e1308. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0001308</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ukena SN, Singh A, Dringenberg U, et al. Probiotic Escherichia coli Nissle 1917 inhibits leaky gut by enhancing mucosal integrity. PLoS ONE. 2007;2:e1308. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0001308</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit50"><label>50</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cani PD, Amar J, Iglesias MA, et al. Metabolic Endotoxemia Initiates Obesity and Insulin Resistance. Diabetes. 2007;56:1761. doi: https://doi.org/10.2337/db06-1491</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cani PD, Amar J, Iglesias MA, et al. Metabolic Endotoxemia Initiates Obesity and Insulin Resistance. Diabetes. 2007;56:1761. doi: https://doi.org/10.2337/db06-1491</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit51"><label>51</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Guarner F, Malagelada J-R. Gut flora in health and disease. Lancet. 2003;361:512–519. doi: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(03)12489-0</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Guarner F, Malagelada J-R. Gut flora in health and disease. Lancet. 2003;361:512–519. doi: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(03)12489-0</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit52"><label>52</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Everard A, Belzer C, Geurts L, et al. Cross-talk between Akkermansia muciniphila and intestinal epithelium controls dietinduced obesity. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013;110:9066–9071. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.1219451110</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Everard A, Belzer C, Geurts L, et al. Cross-talk between Akkermansia muciniphila and intestinal epithelium controls dietinduced obesity. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013;110:9066–9071. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.1219451110</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit53"><label>53</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ewaschuk JB, Diaz H, Meddings L, et al. Secreted bioactive factors from Bifidobacterium infantis enhance epithelial cell barrier function. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2008;295:G1025–G1034. doi: https://doi.org/10.1152/ajpgi.90227.2008</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ewaschuk JB, Diaz H, Meddings L, et al. Secreted bioactive factors from Bifidobacterium infantis enhance epithelial cell barrier function. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2008;295:G1025–G1034. doi: https://doi.org/10.1152/ajpgi.90227.2008</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit54"><label>54</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Shen TY, Qin HL, Gao ZG, et al. Influences of enteral nutrition combined with probiotics on gut microflora and barrier function of rats with abdominal infection. World J. Gastroenterol. 2006;12:4352. doi: https://doi.org/10.3748/wjg.v12.i27.4352</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Shen TY, Qin HL, Gao ZG, et al. Influences of enteral nutrition combined with probiotics on gut microflora and barrier function of rats with abdominal infection. World J. Gastroenterol. 2006;12:4352. doi: https://doi.org/10.3748/wjg.v12.i27.4352</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit55"><label>55</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hamer HM, Jonkers D, Venema K, et al. Review article: The role of butyrate on colonic function. Aliment. Pharmacol. Ther. 2008;27:104–119. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2036.2007.03562.x</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hamer HM, Jonkers D, Venema K, et al. Review article: The role of butyrate on colonic function. Aliment. Pharmacol. Ther. 2008;27:104–119. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2036.2007.03562.x</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit56"><label>56</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Topping DL, Clifton PM. Short-Chain Fatty Acids and Human Colonic Function: Roles of Resistant Starch and Nonstarch Polysaccharides. Physiol. Rev. 2001;81:1031–1064. doi: https://doi.org/10.1152/physrev.2001.81.3.1031</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Topping DL, Clifton PM. Short-Chain Fatty Acids and Human Colonic Function: Roles of Resistant Starch and Nonstarch Polysaccharides. Physiol. Rev. 2001;81:1031–1064. doi: https://doi.org/10.1152/physrev.2001.81.3.1031</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit57"><label>57</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Vinolo MA, Rodrigues HG, Nachbar RT, Curi R. Regulation of inflammation by short chain fatty acids. Nutrients. 2011;3:858–876. doi: https://doi.org/10.3390/nu3100858</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vinolo MA, Rodrigues HG, Nachbar RT, Curi R. Regulation of inflammation by short chain fatty acids. Nutrients. 2011;3:858–876. doi: https://doi.org/10.3390/nu3100858</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit58"><label>58</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Khan MJ, Gerasimidis K, Edwards CA, Shaikh MG. Role of Gut Microbiota in the Aetiology of Obesity:Proposed Mechanisms and Review of the Literature. J. Obes. 2016; 2016:7353642. doi: https://doi.org/10.1155/2016/7353642</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Khan MJ, Gerasimidis K, Edwards CA, Shaikh MG. Role of Gut Microbiota in the Aetiology of Obesity:Proposed Mechanisms and Review of the Literature. J. Obes. 2016; 2016:7353642. doi: https://doi.org/10.1155/2016/7353642</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit59"><label>59</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cani PD, Bibiloni R, Knauf C, et al. Changes in Gut Microbiota Control Metabolic Endotoxemia-Induced Inflammation in High-Fat Diet– Induced Obesity and Diabetes in Mice. Diabetes. 2008;57:1470. doi: https://doi.org/10.2337/db07-1403</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cani PD, Bibiloni R, Knauf C, et al. Changes in Gut Microbiota Control Metabolic Endotoxemia-Induced Inflammation in High-Fat Diet– Induced Obesity and Diabetes in Mice. Diabetes. 2008;57:1470. doi: https://doi.org/10.2337/db07-1403</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit60"><label>60</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Creely SJ, McTernan PG, Kusminski CM, et al. Lipopolysaccharide activates an innate immune system response in human adipose tissue in obesity and type 2 diabetes. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2007;292:E740–E747. doi: https://doi.org/10.1152/ajpendo.00302.2006</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Creely SJ, McTernan PG, Kusminski CM, et al. Lipopolysaccharide activates an innate immune system response in human adipose tissue in obesity and type 2 diabetes. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2007;292:E740–E747. doi: https://doi.org/10.1152/ajpendo.00302.2006</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit61"><label>61</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Pearson J, Brownlee I. The Interaction of Large Bowel Microflora with the Colonic Mucus Barrier. Int. J.Inflamm. 2010;2010:321426. doi: https://doi.org/10.4061/2010/321426</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Pearson J, Brownlee I. The Interaction of Large Bowel Microflora with the Colonic Mucus Barrier. Int. J.Inflamm. 2010;2010:321426. doi: https://doi.org/10.4061/2010/321426</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit62"><label>62</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Clemente-Postigo M, Oliva-Olivera W, Coin-Aragüez L, et al. Metabolic endotoxemia promotes adipose dysfunction and inflammation in human obesity. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2018;316:E319–E332. doi: https://doi.org/10.1152/ajpendo.00277.2018</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Clemente-Postigo M, Oliva-Olivera W, Coin-Aragüez L, et al. Metabolic endotoxemia promotes adipose dysfunction and inflammation in human obesity. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2018;316:E319–E332. doi: https://doi.org/10.1152/ajpendo.00277.2018</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit63"><label>63</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Harte AL, Varma MC, Tripathi G, et al. High fat intake leads to acute postprandial exposure to circulating endotoxin in type 2 diabetic subjects. Diabetes Care. 2012;35:375–382. doi: https://doi.org/10.2337/dc11-1593</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Harte AL, Varma MC, Tripathi G, et al. High fat intake leads to acute postprandial exposure to circulating endotoxin in type 2 diabetic subjects. Diabetes Care. 2012;35:375–382. doi: https://doi.org/10.2337/dc11-1593</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit64"><label>64</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Botao W, Qingmin K, Xiu L, et al. A High-Fat Diet Increases Gut Microbiota Biodiversity and Energy Expenditure Due to Nutrient Difference. Nutrients. 2020;20:12. doi: https://doi.org/10.3390/nu12103197</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Botao W, Qingmin K, Xiu L, et al. A High-Fat Diet Increases Gut Microbiota Biodiversity and Energy Expenditure Due to Nutrient Difference. Nutrients. 2020;20:12. doi: https://doi.org/10.3390/nu12103197</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit65"><label>65</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Гапонов А.М., Волкова Н.И., Ганенко Л.А., и др. Особенности микробиома толстой кишки у пациентов с ожирением при его различных фенотипах. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. — 2021. — Т.98. — №2 — С.144-155. doi: https://doi.org/10.36233/0372-9311-66</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gaponov AM, Volkova NI, Ganenkо LA, et al. Characteristics of the colonic microbiome in patients with different obesity phenotypes. Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2021;98(2):144-155 (In Russ).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit66"><label>66</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Dewulf EM, Cani PD, Claus SP, et al. Insight into the prebiotic concept: Lessons from an exploratory, double blind intervention study with inulin-type fructans in obese women. Gut. 2013;62:1112. doi: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2012-303304</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dewulf EM, Cani PD, Claus SP, et al. Insight into the prebiotic concept: Lessons from an exploratory, double blind intervention study with inulin-type fructans in obese women. Gut. 2013;62:1112. doi: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2012-303304</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit67"><label>67</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Peterson CT, Sharma V, Elmén L, Peterson SN. Immune homeostasis, dysbiosis and the rapeutic modulation of the gut microbiota. Clin. Exp. Immunol. 2015;179:363–377. doi: https://doi.org/10.1111/cei.12474</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Peterson CT, Sharma V, Elmén L, Peterson SN. Immune homeostasis, dysbiosis and the rapeutic modulation of the gut microbiota. Clin. Exp. Immunol. 2015;179:363–377. doi: https://doi.org/10.1111/cei.12474</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit68"><label>68</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cani PD, Possemiers S, Van de Wiele T, et al. Changes in gut microbiota control inflammation in obese mice through a mechanism involving GLP-2- driven improvement of gut permeability. Gut. 2009;58:1091. doi: https://doi.org/10.1136/gut.2008.165886</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cani PD, Possemiers S, Van de Wiele T, et al. Changes in gut microbiota control inflammation in obese mice through a mechanism involving GLP-2- driven improvement of gut permeability. Gut. 2009;58:1091. doi: https://doi.org/10.1136/gut.2008.165886</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit69"><label>69</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Posovszky C, Wabitsch M. Regulation of Appetite, Satiation, and Body Weight by Enteroendocrine Cells. Part 2: Therapeutic Potential of Enteroendocrine Cells in the Treatment of Obesity. Horm. Res. Paediatr. 2015;83:11–18. doi: https://doi.org/10.1159/000369555</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Posovszky C, Wabitsch M. Regulation of Appetite, Satiation, and Body Weight by Enteroendocrine Cells. Part 2: Therapeutic Potential of Enteroendocrine Cells in the Treatment of Obesity. Horm. Res. Paediatr. 2015;83:11–18. doi: https://doi.org/10.1159/000369555</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit70"><label>70</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cani PD, Hoste S, Guiot Y, Delzenne NM. Dietary nondigestible carbohydrates promote L-cell differentiation in the proximal colon of rats. Br. J. Nutr. 2007;98:32–37. doi: https://doi.org/10.1017/S0007114507691648</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cani PD, Hoste S, Guiot Y, Delzenne NM. Dietary nondigestible carbohydrates promote L-cell differentiation in the proximal colon of rats. Br. J. Nutr. 2007;98:32–37. doi: https://doi.org/10.1017/S0007114507691648</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit71"><label>71</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cani PD, Lecourt E, Dewulf EM, et al. Gut microbiota fermentation of prebiotics increases satietogenic and incretin gut peptide production with consequences for appetite sensation and glucose response after a meal. Am. J. Clin. Nutr. 2009;90:1236–1243. doi: https://doi.org/10.3945/ajcn.2009.28095</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cani PD, Lecourt E, Dewulf EM, et al. Gut microbiota fermentation of prebiotics increases satietogenic and incretin gut peptide production with consequences for appetite sensation and glucose response after a meal. Am. J. Clin. Nutr. 2009;90:1236–1243. doi: https://doi.org/10.3945/ajcn.2009.28095</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit72"><label>72</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Parnell JA, Reimer RA. Weight loss during oligofructose supplementation is associated with decreased ghrelin and increased peptide YY in overweight and obese adults. Am. J. Clin. Nutr. 2009;89:1751–1759. doi: https://doi.org/10.3945/ajcn.2009.27465</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Parnell JA, Reimer RA. Weight loss during oligofructose supplementation is associated with decreased ghrelin and increased peptide YY in overweight and obese adults. Am. J. Clin. Nutr. 2009;89:1751–1759. doi: https://doi.org/10.3945/ajcn.2009.27465</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit73"><label>73</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chambers ES, Byrne CS, Morrison DJ, et al. Dietary supplementation with inulin-propionate ester or inulin improves insulin sensitivity in adults with overweight and obesity with distinct effects on the gut microbiota, plasma metabolome and systemic inflammatory responses: A randomised cross-over trial. Gut. 2019;68:1430. doi: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2019-318424</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chambers ES, Byrne CS, Morrison DJ, et al. Dietary supplementation with inulin-propionate ester or inulin improves insulin sensitivity in adults with overweight and obesity with distinct effects on the gut microbiota, plasma metabolome and systemic inflammatory responses: A randomised cross-over trial. Gut. 2019;68:1430. doi: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2019-318424</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit74"><label>74</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tschritter O, Fritsche A, Thamer C, et al. Plasma Adiponectin Concentrations Predict Insulin Sensitivity of Both Glucose and Lipid Metabolism. Diabetes. 2003;52:239. doi: https://doi.org/10.2337/diabetes.52.2.239</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tschritter O, Fritsche A, Thamer C, et al. Plasma Adiponectin Concentrations Predict Insulin Sensitivity of Both Glucose and Lipid Metabolism. Diabetes. 2003;52:239. doi: https://doi.org/10.2337/diabetes.52.2.239</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit75"><label>75</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Alligier M, Dewulf EM, Salazar N, et al. Positive interaction between prebiotics and thiazolidinedione treatment on adiposity in diet-induced obese mice. Obesity. 2014;22:1653–1661. doi: https://doi.org/10.1002/oby.20733</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Alligier M, Dewulf EM, Salazar N, et al. Positive interaction between prebiotics and thiazolidinedione treatment on adiposity in diet-induced obese mice. Obesity. 2014;22:1653–1661. doi: https://doi.org/10.1002/oby.20733</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit76"><label>76</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Thorburn A, Muir J, Proietto J. Carbohydrate fermentation decreases hepatic glucose output in healthy subjects. Metabolism. 1993;42:780–785. doi: https://doi.org/10.1016/0026-0495(93)90249-N</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Thorburn A, Muir J, Proietto J. Carbohydrate fermentation decreases hepatic glucose output in healthy subjects. Metabolism. 1993;42:780–785. doi: https://doi.org/10.1016/0026-0495(93)90249-N</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit77"><label>77</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Berggren AM, Nyman EMGL, Lundquist I, Björck IME. Influence of orally and rectally administered propionate on cholesterol and glucose metabolism in obese rats. Br. J. Nutr. 1996;76: 287–294. doi: https://doi.org/10.1079/BJN19960032</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Berggren AM, Nyman EMGL, Lundquist I, Björck IME. Influence of orally and rectally administered propionate on cholesterol and glucose metabolism in obese rats. Br. J. Nutr. 1996;76: 287–294. doi: https://doi.org/10.1079/BJN19960032</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
